杧果Mangifera indica L.（俗称芒果）为漆树科（Aceraceae）杧果属Mangifera L. 热带常绿大乔木，其分布广泛，世界有70多个国家生产芒果，年产量近2.0×10⁷ t，其中我国年产量1.0×10⁶ t。杧果鲜食或加工后产生大量的果核，果核中的核仁约占杧果总质量的20%左右^{[1, 2]}，但杧果核仁常被废弃，未得到有效利用。杧果核仁具有补肾、祛肾寒的功效，用于肾虚、肾寒、腰腿痛、疝气和睾丸炎等症^[3]。近年来研究表明，杧果核仁具有抑菌止泻^[4]、抗氧化^[2]、抗炎^[5]等药理作用。基于杧果核仁具有补肾、祛肾寒功效，而肾阳虚与弱精症密切相关，且临床上常用补肾阳中药治疗弱精症，前笔者通过实验证实了杧果核仁具有治疗弱精症的作用^[6]。为进一步明确其活性成分，本实验从杧果核仁95%乙醇提取物的二氯甲烷萃取物和正丁醇萃取物中分离得到9个化合物，分别鉴定为维生素E（vitamin E，1）、没食子酸甲酯（methyl gallate，2）、山柰酚（kaempferol，3）、槲皮素（quercetin，4）、3,4-O-异丙基莽草酸（3,4-O-isopropylidene shikimic acid，5）、5-羟基-4-氧代吡喃-2-羧酸（5-hydroxy-4-oxopyran-2-carboxylic acid，6）、阿魏酸（ferulic acid，7）、异槲皮苷（isoquercitrin，8）、1,2,3,4,6-五-O-没食子酰葡萄糖（1,2,3,4,6-penta-O-galloylglucose，9）。其中化合物1、3～6、8为首次从杧果核仁中分离得到，化合物1、7、9在体外能增加弱精症大鼠的精子活力和精子存活率。

Yanaco MP-S3显微熔点测定仪（日本Yanaco公司），Bruker AM-400 MHz型核磁共振光谱仪（瑞士Bruker公司），QTRAP型串联四极杆线性离子阱质谱仪（美国AB SCIEX公司），CMIS型精子质量分析系统（上海北昂医疗技术有限公司）。

柱色谱用硅胶（100～200目，青岛海洋化工厂），Sephadex LH-20型凝胶（Amersham Pharmacia Biotech AB），化学试剂均为分析纯。雷公藤多苷片（批号20120501，黄石飞云制药有限公司），五子衍宗丸（批号130155，云南腾药制药股份有限公司）。“台式”培养液：以NaCl 8.0 g、KCl 0.2 g、CaCl₂ 0.2 g、NaHCO₃ 1.0 g、MgCl₂ 0.1 g、NaH₂PO₄ 0.05 g和葡萄糖1.0 g，加重蒸馏水至1 000 mL配制。杧果核仁各单体化合物，均分别以“台式”培养液配制成40和80 μmol/L的浓度；五子衍宗丸以“台式”培养液配制成40 μmol/L的浓度。

药材采自广西百色市（2012年7月），经四川医科大学庄元春副教授鉴定为杧果Mangifera indica L. 的干燥核仁。标本（20120709）保存于四川医科大学药用植物标本库。

Wistar大鼠，体质量（200±20）g，雄性，由四川医科大学实验动物中心提供，实验动物许可证号SYXK（川）2013-065。

取杧果核仁10.4 kg，加95%乙醇回流提取，每次2 h，提取4次，收集提取液，浓缩至无乙醇味，得乙醇浸膏2.58 kg。取1.5 kg乙醇浸膏，加适量水混悬，混悬液依次以石油醚、二氯甲烷、醋酸乙酯、正丁醇萃取，回收溶剂，得到石油醚萃取物47.6 g、二氯甲烷萃取物58.9 g、醋酸乙酯萃取物285.3 g、正丁醇萃取物53.5 g。取二氯甲烷萃取物50.0 g，先用石油醚-丙酮（50∶1→2∶1）梯度洗脱，合并相同组分，得3个流分Fr. 1～3；再以氯仿-甲醇（20∶1→1∶1）梯度洗脱，合并相同组分，得3个流分Fr. 4～6。Fr. 1（5.0 g）进行硅胶柱色谱，以石油醚- 丙酮（30∶1→10∶1）梯度洗脱，经反复硅胶柱色谱及重结晶得到化合物1（50 mg）、2（20 mg）。Fr. 2（7.0 g）进行硅胶柱色谱，以石油醚-丙酮（20∶1→5∶1）梯度洗脱，再经反复硅胶柱色谱及重结晶，得到化合物3（50 mg）、4（30 mg）。Fr. 4（5.0 g）进行硅胶柱色谱，以氯仿-甲醇（10∶1→3∶1）梯度洗脱，经反复硅胶柱色谱及重结晶，得到化合物5（30 mg）、6（20 mg）、7（20 mg）。

正丁醇萃取物50.0 g经硅胶柱色谱分离，以氯仿-甲醇（20∶1→3∶2）梯度洗脱，相同部分合并，得5个流分Fr. 7～11。Fr. 9（2.0 g）进行硅胶柱色谱，以氯仿-甲醇（6∶1→2∶1）梯度洗脱，其中氯仿-甲醇（3∶1）部分再经Sephedax-LH 20凝胶柱色谱得化合物8（30 mg）和9（30 mg）。

化合物1：淡黄色油状物，mp 2～4 ℃，分子式为C₂₉H₅₀O₂。ESI-MS m/z: 430 [M]⁺。¹H-NMR (400 MHz, CDCl₃) δ: 4.28 (1H, s, -OH), 2.60 (2H, t, J = 6.7 Hz, H-4), 2.20 (3H, s, H-7a), 2.10 (6H, s, H-5a, 8a), 1.81 (2H, m, H-3), 1.26 (3H, s, H-2a)；¹³C-NMR (400 MHz, CDC1₃) 及 DEPT δ: 148.5 (C-9, C), 144.9 (C-6, C), 122.0 (C-8, C), 121.1 (C-7, C), 115.9 (C-5, C), 115.2 (C-10, C), 74.9 (C-2, C), 39.9 (C-1′, -CH₂), 39.5 (C-11′, -CH₂), 37.9 (C-3′, 7′, -CH₂), 37.3 (C-5′, 9′, -CH₂), 32.8 (C-4′, -CH), 32.7 (C-8′, -CH), 31.6 (C-3, -CH₂), 27.9 (C-12′, -CH), 24.8 (C-2′, -CH₂), 24.4 (C-10′, -CH₂), 23.8 (C-2a, -CH₃), 22.5 (C-12′a, -CH₃), 22.4 (C-12′b, -CH₃), 21.1 (C-6′, -CH₂), 20.8 (C-4, -CH₂), 19.8 (C-4′a, -CH₃), 19.7 (C-8′a, -CH₃), 12.2 (C-7a, -CH₃), 11.8 (C-5a, -CH₃), 11.3 (C-8a, -CH₃)。以上数据与文献报道一致^[7]，故鉴定化合物1为维生素E。

化合物2：白色粉末（甲醇），mp 201～203 ℃，分子式为C₈H₈O₅。ESI-MS m/z: 183 [M－H]⁻, 367 [2M－H]⁻。¹H-NMR (400 MHz, CD₃OD) δ: 3.71 (3H, s, -OCH₃), 6.92 (2H, s, H-2, 6)；¹³C-NMR (100 MHz, CD₃OD) δ: 166.9 (-C=O), 145.8 (C-3, 5), 138.8 (C-4), 119.7 (C-1), 108.9 (C-2, 6), 51.7 (-OCH₃)。以上数据与文献报道一致^[8]，故鉴定化合物2为没食子酸甲酯。

化合物3：黄色无定形粉末（甲醇），mp 274～276 ℃，分子式为C₁₅H₁₀O₆。ESI-MS m/z: 285 [M－H]⁻。¹H-NMR (400 MHz, DMSO-d₆) δ: 12.47 (1H, s, 5-OH), 8.02 (2H, d, J = 8.6 Hz, H-2′, 6′), 6.92 (2H, d, J = 8.6 Hz, H-3′, 5′), 6.41 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-8), 6.17 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-6)；¹³C-NMR (100 MHz, DMSO-d₆) δ: 175.9 (C-4), 163.9 (C-7), 160.7 (C-9), 159.2 (C-4′), 156.2 (C-5), 146.8 (C-2), 135.7 (C-3), 129.6 (C-2′, 6′), 121.7 (C-1′), 115.5 (C-3′, 5′), 103.1 (C-10), 98.2 (C-6), 93.5 (C-8)。以上数据与文献报道一致^[9]，故鉴定化合物3为山柰酚。

化合物4：黄色粉末（甲醇），mp 314～316 ℃，分子式为C₁₅H₁₀O₇。ESI-MS m/z: 325 [M＋Na]⁺, 303 [2M＋H]⁺。¹H-NMR (400 MHz, CD₃OD) δ: 12.47 (1H, s, 5-OH), 7.65 (1H, s, H-2′), 7.51 (1H, d, J = 8.5 Hz, H-6′), 6.86 (1H, d, J = 8.5 Hz, H-5′), 6.40 (1H, s, H-8), 6.17 (1H, s, H-6)；¹³C-NMR (100 MHz, CD₃OD) δ: 156.2 (C-2), 147.73 (C-5), 146.9 (C-2), 135.7 (C-3), 175.9 (C-4), 160.8 (C-5), 98.3 (C-6), 163.9 (C-7), 93.4 (C-8), 160.7 (C-9), 103.1 (C-10), 122.0 (C-1′), 115.1 (C-2′), 145.1 (C-3′), 147.7 (C-4′), 115.7 (C-5′), 120.1 (C-6′)。以上数据与文献报道一致^[10]，故鉴定化合物4为槲皮素。

化合物5：片状结晶（石油醚-丙酮），mp 174～176 ℃，分子式为C₁₀H₁₄O₅。ESI-MS m/z: 213 [M－H]⁻, 427 [2M－H]⁻。¹H-NMR (400 MHz, C₅D₅N) δ: 7.35 (1H, t, J = 1.7 Hz, H-2), 5.02 (1H, m, H-3), 4.51 (1H, t, J = 6.4 Hz, H-4), 4.42 (1H, td, J = 4.4, 6.8 Hz, H-5), 3.20 (1H, dd, J = 4.4, 17.4 Hz, H-6a), 2.84 (1H, dd, J = 6.9, 17.4 Hz, H-6b), 1.49 (3H, s, -CH₃), 1.44 (3H, s, -CH₃)；¹³C-NMR (100 MHz, C₅D₅N) δ: 169.4 (-COOH), 132.3 (C-1), 134.2 (C-2), 109.3 (C-8), 78.7 (C-4), 73.2 (C-3), 68.3 (C-5), 30.8 (C-6), 28.4 (10-CH₃), 26.2 (9-CH₃)。以上数据与文献报道一致^[11]，故鉴定化合物5为3,4-O-异亚丙基莽草酸。

化合物6：无色片状结晶（甲醇），mp 210～212 ℃，分子式为C₆H₄O₅。ESI-MS m/z: 157 [2M＋H]⁺, 179 [M＋Na]⁺。¹H-NMR (400 MHz, DMSO-d₆) δ: 6.91 (1H, s, H-3), 8.17 (1H, s, H-6)；¹³C-NMR (100 MHz, DMSO-d₆) δ: 116.1 (C-3), 140.4 (C-6), 147.6 (C-5), 152.4 (C-2), 173.8 (C-4), 160.8 (-COOH)。以上数据与文献报道一致^[12]，故鉴定化合物6为5-羟基- 4-氧代吡喃-2-羧酸。

化合物7：白色针状结晶（甲醇），mp 170～172 ℃，分子式为C₁₀H₁₀O₄。ESI-MS m/z: 195 [2M＋H]⁺, 177 [M－OH]⁺。¹H-NMR (400 MHz, DMSO-d₆) δ: 7.46 (1H, d, J = 15.9 Hz, H-3′), 6.34 (1H, d, J = 15.9 Hz, H-2′), 7.26 (1H, s, H-2), 7.06 (1H, dd, J = 8.1, 1.7 Hz, H-6), 6.77 (1H, d, J = 8.1 Hz, H-5), 3.79 (3H, s, -OCH₃)；¹³C-NMR (100 MHz, DMSO-d₆) 及DEPT δ: 167.9 (C-1′, -COOH), 149.1 (C-3, C), 147.9 (C-4, C), 144.4 (C-3′, -CH), 125.8 (C-1, C), 122.7 (C-6, -CH), 115.7 (C-2′, -CH), 115.6 (C-5, -CH), 110.3 (C-2, -CH), 55.7 (-OCH₃)。以上数据与文献报道一致^[13]，故鉴定化合物7为阿魏酸。

化合物8：黄色粉末（甲醇），mp 223～225 ℃，分子式为C₂₁H₂₀O₁₂。ESI-MS m/z: 464 [M]⁺, 463 [M－H]⁻, 927 [2M－H]⁻。¹H-NMR (400 MHz, CD₃OD) δ: 12.6 (1H, s, 5-OH), 9.26 (1H, s, 7-OH), 7.57 (1H, d, J = 2.5 Hz, H-2′), 7.56 (1H, d, J = 6.0 Hz, H-5′), 6.83 (1H, dd, J = 6.0, 2.5 Hz, H-6′), 6.39 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-8), 6.18 (1H, d, J = 2.0 Hz, H-6), 5.46 (1H, d, J = 7.6 Hz, H-1″)；¹³C-NMR (100 MHz, CD₃OD) δ: 156.3 (C-2), 133.3 (C-3), 177.5 (C-4), 161.3 (C-5), 98.7 (C-6), 164.1 (C-7), 93.5 (C-8), 156.2 (C-9), 104.0 (C-10), 121.6 (C-1′), 121.2 (C-2′), 144.8 (C-3′), 148.5 (C-4′), 116.2 (C-5′), 115.2 (C-6′), 100.8 (C-1″), 74.1 (C-2″), 76.5 (C-3″), 69.9 (C-4″), 77.6 (C-5″), 60.9 (C-6″)。以上数据与文献报道一致^[14]，故鉴定化合物8为异槲皮苷。

化合物9：浅棕色粉末（甲醇），mp 256～258℃，分子式为C₄₁H₃₂O₂₆。ESI-MS m/z: 939 [M－H]⁻。¹H-NMR (400 MHz, CD₃COCD₃) δ: 6.33 (1H, d, J = 8.4 Hz, Glc-H-1), 5.92 (1H, t, J = 9.6 Hz, Glc-H-3), 5.46 (1H, t, J = 9.6 Hz, Glc-H-4), 5.43 (1H, t, J = 9.6 Hz, Glc-H-2), 4.43 (1H, m, Glc-H-5), 4.30 (2H, d, J = 8.0 Hz, Glc-H-6), 6.77, 6.82, 6.85, 6.92, 6.97 (各 2H, s, galloyl-H-2, 6)；¹³C-NMR (100 MHz, CD₃COCD₃) 及DEPT δ: 92.3 (Glc-C-1, -CH), 71.1 (Glc-C-2, -CH), 72.6 (Glc-C-3, -CH), 68.2 (Glc-C-4, -CH), 72.8 (Glc-C-5, -CH), 61.9 (Glc-C-6, -CH₂), 164.5, 164.7, 165.0, 165.5,166.0 (各1C, galloyl-C-7, -COO), 118.0, 118.3, 118.7, 119.2, 119.6 (各1C, galloyl-C-1, C), 109.3, 109.5, 109.6, 109.8, 110.2 (各2C, galloyl-C-2, 6, -CH), 145.6, 145.7, 145.8, 146.0, 146.4 (各2C, galloyl-C-3, 5, C), 139.0, 139.2, 139.4, 140.0, 140.3 (各1C, galloyl-C-4, C)。以上数据与文献报道一致^[15]，故鉴定化合物9为1,2,3,4,6-五-O-没食子酰葡萄糖。

40只雄性Wistar大鼠，在同一环境室温下，自由进食饮水。随机分为正常对照组20只和模型组20只。模型组均每日ig 20 mg/kg雷公藤多苷片，对照组ig等体积生理盐水（0.02 mL/g），连续30 d。30 d后，模型组和正常对照组各随机抽取10只大鼠，立即处死，摘除左侧睾丸和附睾。睾丸用4%多聚甲醛固定，常规石蜡包埋，HE染色，光镜下观察睾丸组织病理改变。附睾剪碎于2.0 mL“台式”培养液中，在30 ℃恒温水浴中保温10 min，待精子充分游离后，血球计数板计数，用“台式”培养液将精液稀释至2×10⁷个/mL。移取10 μL在CMIS型精子质量分析系统检测精子密度、精子存活率、精子活力和精子畸形率。

弱精症大鼠模型建立后，立即处死模型组和对照组各剩余的10只大鼠，分别摘取附睾，附睾按“4.1.1”项方法处理后，以“台式”培养液稀释至2×10⁷个/mL。正常大鼠每例精子悬液1份（30 μL/份），弱精症大鼠每例精子悬液20份（30 μL/份），分别移入21只离心管中。实验设正常对照组、模型组、阳性对照组及实验组。①正常对照组（1份）：30 μL“台式”培养液与30 μL正常大鼠精子悬液混匀；②模型组（1份）：30 μL“台式”培养液与30 μL弱精症大鼠精子悬液混匀；③阳性对照组（1份）：30 μL浓度为40 μmol/L的五子衍宗丸与30 μL弱精症大鼠精子悬液混匀；④实验组（总计18份）：实验组为杧果核仁单体化合物（1～9），各单体化合物均设2个不同浓度组（40和80 μmol/L），各取30 μL分别与30 μL弱精症大鼠精子悬液混匀。各离心管置于37 ℃恒温水浴箱培养孵育0、1、2 h，移取10 μL，用CMIS型精子质量分析系统检测精子活力和精子存活率。

数据以x±s表示，实验数据应用SPSS 13.0统计软件进行统计处理。采用单因素方差分析进行统计学分析，组间比较采用Dunnett’s t检验。

睾丸病理切片显示对照组睾丸细胞学无异常改变，曲细精管内精子发生完全，各级生精细胞排列规整；模型组生精上皮变薄，睾丸曲细精管管腔变大，多数管腔内可见空泡变性的生精细胞或巨核细胞，各级生精细胞和精子数量明显减少，部分管腔生精细胞全部破坏，偶见残存的支持细胞，间质内可见水肿或结缔组织增生（图 1）。附睾中的精子显示：与正常对照组相比，模型组的精子密度、精子存活率、精子活力都较低，精子畸形率较高，均有显著差异（P<0.01，表 1）。睾丸病理切片及附睾精子质量表明，ig大鼠雷公藤多苷，可造成大鼠睾丸受损，精子发生、成熟障碍以及附睾精子质量降低，可成功建立弱精症大鼠模型。

图 1 睾丸组织比较 (HE染色，×200) Fig.1 Comparison on testicular tissue (HE dying, × 200)

表 1(Table 1)

表 1 精子质量比较 Table 1 Comparison on sperm quality (x±s,n = 10) 组别 精子密度/(×106∙mL−1) 精子存活率/% 精子活力/% 精子畸形率/% 正常对照 26.50±3.89 46.80±4.05 38.80±3.21 22.00±2.23 模型 15.20±3.25** 32.10±3.16** 25.60±2.58** 30.80±4.36** 与正常对照组比较：**P<0.01** P < 0.01 vs normal group

表 1 精子质量比较 Table 1 Comparison on sperm quality

与正常对照组比较，模型组的精子活力和精子存活率在0、1、2 h都较低，并有极显著性差异（P<0.01）。模型组、正常对照组、阳性对照组及各实验组的精子活力、存活率均随时间延长而减弱。在0 h，实验组各化合物和模型组比较，精子活力和存活率均没有差异（P>0.05）。在1、2 h，40和80 μmol/L的化合物1（维生素E）、7（阿魏酸）及9（1,2,3,4,6-五-O-没食子酰葡萄糖）与模型组比较，精子活力和存活率均增加，并有显著差异（P<0.05、0.01），并随浓度增加，精子活力和精子存活率增加。其他化合物在1和2 h，与模型组比较，精子活力和存活率均无差异（P>0.05）。结果见表 2和3。

表 2(Table 2)

表 2 化合物对弱精症大鼠体外精子活力的影响 Table 2 Effect of compounds on sperm motility of asthenospermia rats in vitro (x±s,n = 10) 化合物 剂量/(μmol·L−1) 精子活力/% 化合物 剂量/(μmol·L−1) 精子活力/% 0 h 1 h 2 h 0 h 1 h 2 h 正常对照 38.5±4.32 25.2±5.01 15.30±4.36 5 40 23.5±5.04 14.8±3.56 6.88±2.10 模型 24.9±5.05## 16.0±3.50## 7.60±2.51## 80 24.0±4.95 15.2±3.69 6.68±2.36 阳性对照 26.1±4.89 20.2±4.31** 13.80±3.05** 6 40 24.9±6.01 15.0±4.12 7.02±2.36 1 40 25.2±4.12 19.2±3.19 10.60±2.18 80 25.2±3.98 14.6±3.98 7.23±2.91 80 25.4±3.85 20.8±4.02** 12.50±2.31** 7 40 24.7±3.99 18.9±3.26 10.20±2.85 2 40 25.8±6.02 15.1±5.12 7.35±2.36 80 25.1±5.21 19.6±4.31 10.80±2.68 80 25.6±6.21 15.5±4.96 7.21±2.45 8 40 24.7±5.02 14.6±4.21 6.88±3.10 3 40 23.6±5.17 14.5±4.03 7.08±2.69 80 24.9±4.89 14.8±4.18 7.21±2.65 80 24.2±4.12 14.8±3.98 7.23±2.56 9 40 26.2±6.75 18.8±4.01 10.10±3.12 4 40 26.1±7.02 15.6±4.85 7.23±2.34 80 25.9±7.02 20.9±4.29** 11.50±3.24** 80 25.4±6.08 15.3±4.32 7.31±2.56 与正常对照组比较：#P<0.05 ##P<0.01；与模型对照组比较：*P<0.05 **P<0.01，下同 #P < 0.05 ##P< 0.01 vs normal group; P < 0.05 **P < 0.01 vs model group, same as below

表 2 化合物对弱精症大鼠体外精子活力的影响 Table 2 Effect of compounds on sperm motility of asthenospermia rats in vitro

表 3(Table 3)

表 3 化合物对弱精症大鼠体外精子存活率的影响 Table 3 Effect of compounds on sperm survival rate of asthenospermia rats in vitro (x±s,n = 10) 化合物 剂量/(μmol·L−1) 精子存活率/% 化合物 剂量/(μmol·L−1) 精子存活率/% 0 h 1 h 2 h 0 h 1 h 2 h 正常对照 46.1±4.23 28.6±4.96 21.90±3.85 5 40 32.9±7.69 17.9±4.12 10.50±2.98 模型 33.5±6.86## 18.5±5.02## 10.60±3.42## 80 33.1±7.89 18.1±5.23 10.60±2.69 阳性对照 33.8±7.02 24.8±4.96 18.90±4.31** 6 40 32.2±6.98 18.3±5.02 11.10±3.55 1 40 33.9±7.25 23.2±5.05 14.20±3.35 80 33.9±7.38 18.6±4.64 10.70±2.88 80 33.8±7.96 24.3±4.80 16.50±4.69** 7 40 32.8±6.25 23.3±4.25 13.90±2.85 2 40 34.0±8.01 17.9±3.68 11.20±3.85 80 33.7±7.56 23.9±5.51 17.20±3.97** 80 34.9±7.85 18.2±4.21 10.60±3.02 8 40 32.9±6.68 19.5±5.12 9.89±2.99 3 40 32.3±7.96 18.3±4.21 10.70±2.94 80 33.1±6.57 18.2±3.65 10.60±3.31 80 33.0±8.10 18.5±4.65 9.95±2.65 9 40 32.1±7.23 23.1±5.21 13.70±3.02 4 40 32.8±8.03 18.5±4.11 10.70±3.19 80 33.6±8.01 24.5±4.68 18.10±4.51** 80 33.1±8.92 17.6±5.05 10.50±3.01

表 3 化合物对弱精症大鼠体外精子存活率的影响 Table 3 Effect of compounds on sperm survival rate of asthenospermia rats in vitro

从杧果核仁中分离得到9个化合物，化合物1、3～6、8为首次从杧果核仁中分离得到。

弱精症是导致男性不育的主要原因，其发病机制为睾丸及附睾受损造成的精子发生、成熟障碍^[16]。雷公藤多苷作用于精子细胞的变态期，抑制晚期精子细胞精核蛋白转化和精子在附睾中的成熟，损伤睾丸生精细胞，导致精子生成发生障碍，并影响精子的活力，因此常采用雷公藤多苷建立弱精症动物模型^{[17, 18]}。本实验睾丸病理切片及附睾精子质量分析表明，连续30 d给予大鼠每日ig 20 mg/kg雷公藤多苷，不仅可造成大鼠睾丸、附睾功能损伤，而且可造成大鼠附睾中的精子密度、精子存活率和精子活力降低，精子畸形率升高，揭示了本实验通过ig大鼠雷公藤多苷，成功建立了雄性大鼠弱精症模型。实验结果还表明，化合物1、7和9在体外能使弱精症大鼠的精子活力和精子存活率增加，为杧果核仁临床治疗弱精症提供了科学依据。