2. 河北师范大学生命科学学院, 河北 石家庄 050016 ;
3. 河北工程大学, 河北 邯郸 056038
2. College of Life Science, Hebei Normal University, Shijiazhuang 050016, China ;
3. Hebei University of Engineering, Handan 056038, China
蛇床子为伞形科(Umbelliferae)植物蛇床Cnidium monnieri (L.) Cuss.的干燥成熟果实,具有燥湿祛风、杀虫止痒、温肾壮阳的功效,主要用于阴痒带下、湿疹瘙痒、湿痹腰痛、肾虚阳痿、宫冷不孕等症[1]。现代药理实验研究发现蛇床子对各类骨质疏松症模型动物具有明显的防治作用,能显著减少类固醇激素所致骨丢失,抑制骨吸收,提高骨密度,并认为其活性部位是总香豆素和总黄酮类成分[2]。同时,其化学成分的系统研究文献报道较少,为了进一步寻找活性成分,有效开发利用资源,本实验在前期研究[3]的基础上,继续对其活性成分进行研究,从其中分离得到9个化合物。根据理化性质和波谱学数据分别鉴定为5, 7-二羟基-6, 8-二甲氧基-2-甲基色原酮(5, 7-dihydroxy-6, 8-dimethoxy-2-methyl-4H-chromen-4-one,1)、5-羟基-2-羟甲基色原酮(5-hydroxy-2-hydroxymethyl-4H-chromen-4-one,2)、(+)-marmesin(3)、佛手酚(bergaptol,4)、异佛手柑内酯(isobergapten,5)、7-羟基-8-异戊烯二醇基香豆素(6)、murraol(7)、松柏醛(coniferyl aldehyde,8)、间羟基苯甲酸(m-hydroxybenzoic acid,9)。其中化合物1~6为首次从蛇床属植物中分离得到。并对所有分离得到的化合物进行了类成骨UMR106细胞增殖活性的测定,发现化合物1、3和7能一定程度促进UMR106细胞的增殖。
1 仪器与材料电喷雾电离质谱(ESI-MS)使用HP-1100LC/ API/MSD系统(美国Agilent公司);Bruker AV-500核磁共振仪(德国布鲁克公司);二氧化碳培养箱(BPN-240CRH,上海);柱色谱用硅胶(100~200、200~300目,青岛海洋化工厂);Sephadex LH-20凝胶(Pharmacia公司);ODS柱色谱材料(YMC公司);LSA-10型大孔树脂(西安蓝晓科技新材料股份有限公司);HPLC分析及制备仪器型号为岛津Shimazu AB HPLC仪(分析柱:Zorbax-C18,150 mm×4.6 mm,10 μm;制备柱:Zorbax ODS,250 mm×21.2 mm);UMR106细胞(American Type Culture Collection,序号CRL-1661);酶标仪(Beckmann Cooulter);17β-雌二醇(E2,美国Sigama公司);所用试剂均为化学纯或分析纯。
实验药材于2014年9月购于河北省安国市药材市场,产地为河北省沧州市,经河北师范大学赵建成教授鉴定为伞形科植物蛇床Cnidium monnieri (L.) Cuss.的干燥成熟果实。标本(N20140901)现存放于河北省中医药科学院。
2 提取与分离蛇床子干燥样品30 kg,用75%乙醇回流提取2次,每次2 h,合并2次提取液,减压回收溶剂至干,残留物加适量水分散,冷藏静置24 h,离心,上清液通过LSA-10型大孔吸附树脂,依次用水和70%乙醇洗脱,合并醇洗脱液,回收溶剂至干,残留物减压干燥,加甲醇回流提取至提取液近无色,合并甲醇提取液,减压回收溶剂至干,残留物减压干燥,得干浸膏160.8 g。上述干浸膏经硅胶柱色谱分离,氯仿-甲醇(100:1→1:1)梯度洗脱,根据TLC合并大致相同的组分,得到7个不同极性段组分:A(100:1)、B(50:1)、C(20:1)、D(10:1)、E(5:1)、F(3:1)、G(1:1)。对组分A(10.3 g)进一步硅胶柱色谱分离,以石油醚-丙酮(5:1→1:1)进行梯度洗脱,得到5个组分Fr.A1~A5,Fr.A2(2.3 g)硅胶柱色谱以石油醚-醋酸乙酯(10:1)洗脱,得化合物1(10 mg)。Fr.A5(1.9 g)用硅胶柱色谱进一步分离得到6个组分Fr.A5-1~A5-6,其中Fr.A5-2(0.3 g)经SephadexLH-20凝胶柱色谱(甲醇洗脱)分离纯化,得到化合物2(9 mg)。对组分B(7.3 g)进一步硅胶柱色谱分离,以二氯甲烷-丙酮(7:1→1:1)进行梯度洗脱,得到7个组分Fr.B1~B7,Fr.B3(1.2 g)用硅胶柱色谱进一步分离得到Fr.B3-4,再经HPLC纯化(70%乙腈-水,体积流量为6 mL/min)得到化合物4(11 mg),Fr.B5(0.8 g)用硅胶柱色谱进一步分离得到Fr.B5-2,再经HPLC纯化(30%乙腈-水,体积流量为6 mL/min)得到化合物3(7 mg)和6(5 mg)。对组分C(11.5 g)进一步硅胶柱色谱分离,以石油醚-丙酮(4:1)和二氯甲烷-甲醇(10:1)作为洗脱溶剂反复进行柱色谱分离,再经SephadexLH-20柱色谱(甲醇洗脱)分离纯化,得到化合物5(33mg)。对组分D(19.5 g)进一步硅胶柱色谱分离,以氯仿-丙酮(4:1→1:1)梯度洗脱得到4个组分Fr.D1~D4,Fr.D4(2.5 g)首先经SephadexLH-20柱色谱初步分离,以氯仿-甲醇(1:3)为洗脱溶剂,然后经硅胶柱色谱,以石油醚-丙酮(1:1)作为洗脱溶剂反复分离,得到化合物7(19mg)。对组分F(3.6 g)进一步硅胶柱色谱分离,以氯仿-甲醇(5:1→1:1)梯度洗脱得到3个流分Fr.E1~E3,Fr.E2(1.0 g)首先以甲醇-水(3:1)为洗脱溶剂进行ODS柱色谱分离,再经SephadexLH-20柱色谱(甲醇洗脱)分离纯化,得到化合物8(22mg)。对组分G(5.3 g)进一步硅胶柱色谱分离,共得到5个组分Fr.G1~G5,其中Fr.G4经丙酮重结晶得到化合物9(31 mg)。
3 结构鉴定化合物1:无色针状结晶(甲醇);ESI-MS m/z:253 [M+H]+;1H-NMR(500 MHz, DMSO-d6)δ: 12.67(1H, s, 5-OH), 6.25(1H, s, 7-OH), 6.19(1H, brs, H-3), 3.78(3H, s, 8-OMe), 3.74(3H, s, 6-OMe), 2.38(3H, s, 2-Me);13C-NMR(125MHz, DMSO-d6)δ: 167.6(C-2), 107.5(C-3), 182.2(C-4), 102.5(C-4a), 148.4(C-5), 131.3(C-6), 150.8(C-7), 127.6(C-8), 145.9(C-8a), 60.7(8-OMe), 60.2(6-OMe), 19.9(2-Me)。以上数据与文献报道基本一致[4],鉴定化合物1为5, 7-二羟基-6, 8-二甲氧基-2-甲基色原酮。
化合物2:无色粉末(氯仿);ESI-MS m/z:193 [M+H]+;1H-NMR(500 MHz, CDCl3)δ: 7.61(1H, t, J=8.5 Hz, H-7), 6.99(1H, t, J=8.5 Hz, H-6), 6.78(1H, t, J=8.5Hz, H-8), 6.43(1H, s, H-3), 4.51(2H, s, H-11);13C-NMR(125MHz, CDCl3)δ: 171.1(C-2), 105.7(C-3), 183.6(C-4), 110.2(C-4a), 156.5(C-5), 106.8(C-6), 135.4(C-7), 110.7(C-8), 160.4(C-8a), 60.1(C-11)。以上数据与文献报道基本一致[5],鉴定化合物2为5-羟基-2-羟甲基色原酮。
化合物3:无色块晶(甲醇);ESI-MS m/z:247 [M+H]+;1H-NMR(500 MHz, CDCl3)δ: 7.58(1H, d, J=9.5 Hz, H-4), 7.23(1H, s, H-5), 6.72(1H, s, H-8), 6.18(1H, d, J=9.5Hz, H-3), 4.72(1H, dd, J=9.1, 8.5 Hz, H-2′), 3.21(2H, m, H-3′), 1.36(3H, s, H-5′), 1.24(3H, s, H-6′);13C-NMR(125MHz, CDCl3)δ: 161.4(C-2), 112.3(C-3), 143.6(C-4), 112.8(C-4a), 123.4(C-5), 125.1(C-6), 163.2(C-7), 97.9(C-8), 155.7(C-8a), 91.1(C-2′), 29.5(C-3′), 71.6(C-4′), 26.2(C-5′), 24.3(C-6′)。以上数据与文献报道基本一致[6],鉴定化合物3为(+)-marmesin。
化合物4:无色针晶(甲醇);ESI-MS m/z:203 [M+H]+;1H-NMR(500 MHz, DMSO-d6)δ: 11.24(1H, s, 5-OH), 8.22(1H, d, J=9.5 Hz, H-4), 7.87(1H, d, J=2.4 Hz, H-2′), 7.16(1H, d, J=2.4 Hz, H-3′), 7.14(1H, s, H-8), 6.25(1H, d, J=9.5 Hz, H-3);13C-NMR(125MHz, DMSO-d6)δ: 160.3(C-2), 110.8(C-3), 139.7(C-4), 104.5(C-4a), 147.8(C-5), 112.4(C-6), 156.8(C-7), 90.9(C-8), 152.5(C-8a), 144.8(C-2′), 110.8(C-3′)。以上数据与文献报道基本一致[7],鉴定化合物4为佛手酚。
化合物5:白色棱晶(丙酮);ESI-MS m/z:217 [M+H]+;1H-NMR(500 MHz, CDCl3)δ: 8.20(1H, d, J=9.5 Hz, H-4), 7.61(1H, d, J=2.3 Hz, H-2′), 7.07(1H, d, J=2.3 Hz, H-3′), 6.93(1H, s, H-6), 6.35(1H, d, J=9.5 Hz, H-3), 4.01(3H, s, 5-OMe);13C-NMR(125MHz, CDCl3)δ: 160.9(C-2), 112.1(C-3), 139.7(C-4), 105.8(C-4a), 154.2(C-5), 90.4(C-6), 157.9(C-7), 110.0(C-8), 148.7(C-8a), 144.3(C-2′), 103.8(C-3′), 56.2(5-OMe)。以上数据与文献报道基本一致[8],鉴定化合物5为异佛手柑内酯。
化合物6:白色棱晶(氯仿);1H-NMR(500 MHz, CDCl3)δ: 7.65(1H, d, J=9.5 Hz, H-4), 7.26(1H, d, J=8.5 Hz, H-5), 6.81(1H, d, J=8.5 Hz, H-6), 6.25(1H, d, J=9.5 Hz, H-3), 3.95(1H, t, J=5.0 Hz, H-2′), 3.25(1H, dd, J=2.5, 16.0 Hz, H-1′a), 2.79(1H, dd, J=7.5, 16.0 Hz, H-1′b), 1.44(3H, s, H-5′), 1.36(3H, s, H-4′);13C-NMR(125MHz, CDCl3)δ: 161.3(C-2), 114.3(C-3), 143.8(C-4), 107.5(C-4a), 126.7(C-5), 112.4(C-6), 156.4(C-7), 112.1(C-8), 153.6(C-8a), 25.8(C-1′), 68.4(C-2′), 78.0(C-3′), 22.1(C-4′), 24.6(C-5′)。以上数据与文献报道基本一致[9],鉴定化合物6为7-羟基-8-异戊烯二醇基香豆素。
化合物7:白色针晶(醋酸乙酯);ESI-MS m/z:261 [M+H]+;1H-NMR(500 MHz, CDCl3)δ: 7.61(1H, d, J=9.5 Hz, H-4), 7.27(1H, d, J=8.6 Hz, H-5), 7.00(1H, d, J=16.5 Hz, H-2′), 6.85(1H, d, J=8.6 Hz, H-6), 6.62(1H, d, J=16.5 Hz, H-1′), 6.25(1H, d, J=9.5 Hz, H-3), 3.95(3H, s, 7-OMe), 1.46(6H, s, H-4′, 5′);13C-NMR(125MHz, CDCl3)δ: 160.8(C-2), 112.9(C-3), 143.8(C-4), 112.8(C-4a), 126.8(C-5), 107.5(C-6), 160.1(C-7), 113.5(C-8), 152.0(C-8a), 114.2(C-1′), 144.3(C-2′), 71.5(C-3′), 29.8(C-4′), 29.8(C-5′), 56.1(7-OMe)。以上数据与文献报道基本一致[10],鉴定化合物7为murraol。
化合物8:淡黄色粉末(氯仿);三氯化铁反应呈阳性,提示有酚羟基;ESI-MSm/z: 201 [M+Na]+;1H-NMR(500 MHz, CDCl3)δ:9.62(1H, d, J=7.8 Hz, H-9), 7.38(1H, d, J=16.0 Hz, H-7), 7.11(1H, dd, J=7.2, 2.0 Hz, H-5), 7.09(1H, d, J=2.0 Hz, H-3), 6.91(1H, d, J=7.2 Hz, H-6), 6.56(1H, dd, J=16.0, 7.8 Hz, H-8), 3.94(3H, s, 2-OMe);13C-NMR(125 MHz, CDCl3)δ: 149.1(C-1), 147.1(C-2), 109.5(C-3), 126.8(C-4), 124.3(C-5), 115.0(C-6), 153.3(C-7), 126.5(C-8), 193.8(C-9), 56.1(2-OMe)。以上数据与文献报道基本一致[11],鉴定化合物8为松柏醛。
化合物9:白色针状结晶(丙酮),1H-NMR(500 MHz, C5D5N)δ: 10.86(1H, brs, COOH), 8.25(1H, d, J=8.0 Hz, H-6), 7.48(1H, m, H-5), 7.17(1H, d, J=8.5 Hz, H-4), 6.93(1H, brs, H-2);13C-NMR(125MHz, C5D5N)δ: 115.4(C-1), 117.8(C-2), 163.0(C-3), 119.2(C-4), 131.4(C-5), 135.4(C-6), 174.5(COOH)。以上数据与文献报道基本一致[12],鉴定化合物9为间羟基苯甲酸。
4 细胞毒活性研究UMR106细胞是大鼠骨肉瘤细胞系,具有成骨细胞的特点,自20世纪70年代以来,作为体外研究模型,广泛用于各种激素及药物对骨的作用机制研究[13]。
细胞以4 000个/孔的密度接种于96孔板,以体积分数为10% FBS/DMEM培养液培养48 h,换成体积分数为5% Sfbs/pf-DMEM的培养基,24 h后加入浓度为1×10−10 mol/L的待测化合物共培养,48 h后每孔加入2 g/L MTS和0.92 g/L PMS混合溶液100 μL培养2 h,于490 nm下测定吸光度(A)值,以A来评价细胞的增殖情况。每次测定均需同时测定对照组与阳性组,阳性组选取浓度为1×10−10 mol/L的雌二醇(E2)[14]。按照公式计算细胞增殖促进率。
细胞增殖促进率=A样品/A对照-1
结果表明,在1×10−10 mol/L的条件下,化合物1、3、7能促进UMR106细胞的增殖,增殖促进率分别为31.55%、32.39%和30.87%,其余化合物的促进率均不明显。同等条件下,E2的细胞增殖促进率为21.3%。活性测试结果说明蛇床子中除了香豆素类化合物外,部分色原酮类化合物也具有一定程度的抗骨质疏松活性,为后续蛇床子抗骨质疏松活性的物质基础研究提供了参考依据。
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