三叶豆紫檀苷(trifolirhizin,Tri),又名红车轴草根苷、红车轴草根苷、三叶豆根苷、高丽槐素-D-葡萄糖,是豆科槐属植物苦参Sophora flavescens Ait. 的干燥根分离得到的紫檀烷类黄酮化合物,现代药理研究表明其具有抗炎、抗肿瘤等活性[1, 2]。此外,其也显示出酪氨酸酶抑制作用并能抑制小鼠B16黑素瘤细胞黑素合成,提示其可作为对紫外线敏感的皮肤的一种新型美白剂[3]。课题组研究表明Tri的水溶性、脂溶性均较差,属生物药剂学分类系统(biopharmaceutics classification system,BCS)第IV类药物,口服生物利用度低。
磷脂复合物(phospholipid complex,PC)通过提高药物亲脂性改善其生物膜透过,显著提高生物利用度及生物有效性[4, 5, 6, 7, 8],然而PC过于黏稠导致其在水中不易分散。自微乳药物传递系统(self- microemulsifying drug delivery system,SMEDDS)可改善水难溶性/脂溶性药物的溶出度,提高药物吸收的速度和程度,促进PC在水中分散,近年来成为研究热点[9, 10, 11, 12]。本研究联合采用PC与SMEDDS技术制备Tri磷脂复合物(TPC)自微乳(TPC- SMEDDS),全面解决Tri不良的溶解性和渗透性问题[13],并通过Caco-2细胞考察Tri及其制剂的跨膜转运。Tri通过制成磷脂复合物自微乳以改善吸收的研究,国内外未见相关报道。
1 仪器与材料Bruker-400型超导核磁共振光谱仪,德国布鲁克公司;Waters 2695-2996型HPLC仪,美国Waters公司;Diamonsil C18(250 mm×4.6 mm,5 μm)色谱柱,美国Dikma公司;MAT LCQ质谱仪,美国Finnigan公司;Transwell细胞培养板,丹麦NUNC公司;CO2培养箱,美国Thermo公司;Millicell-ERS跨膜电阻仪,美国Millipore公司;XDS-1倒置显微镜,重庆光电仪器总公司;台式离心机,上海安亭科学仪器厂;超净工作台,苏州净化工程设备有限公司;Milli-Q纯水机,美国Millipore公司。
硅胶(80~100、200~300目),青岛海洋化工厂;薄层色谱用硅胶板(Silica gel60F254);Tri原料药(实验室自制,批号20130812,质量分数>98%);TPC及TPC-SMEDDS(实验室自制);卵磷脂,阿拉丁工业公司,中国上海;聚氧乙烯蓖麻油(Cremphor EL40)、聚氧乙烯氢化蓖麻油(Cremphor RH40),巴斯夫,德国;丙二醇单辛酸酯(Capyrol 90)、二乙二醇单乙基醚(Transcutol HP)、辛酸癸酸聚乙二醇甘油酯(Labrasol®),嘉法狮,中国上海;聚山梨酯80、聚乙二醇(polyethylene glycol,PEG)400,天津博迪化学有限公司;蓖麻油,天津富宇精细化工有限公司;油酸乙酯,天津光复精细化工研究院;肉豆蔻酸异丙酯,国药集团化学试剂有限公司;甲醇为色谱醇,其他试剂均为分析醇。Caco-2细胞,Corning Costar,New York;DMSO,上海联硕生物科技有限公司;DMEM(Dulbecco’s Modified Eagle Media,高糖)培养基、胎牛血清、非必需氨基酸、青-链霉素、HBSS(Hank’s balanced salt solution)缓冲液、0.25%胰蛋白酶-0.02% 乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid,EDTA)消化液,Invitrogen Co. Grand Island. NY,美国。
2 方法与结果 2.1 Tri的制备 2.1.1 Tri的分离制备取干燥的苦参3.0 kg,80%乙醇回流提取,所得固形物加95%乙醇超声溶解,离心除残渣,上清液回收溶剂所得固形物以0.5% HCl超声溶解残留的生物碱成分,取残渣用蒸馏水多次洗涤,直至呈中性,减压干燥,即得苦参总黄酮提取物(得率为2.1%)[14]。以硅胶柱(200~300目)分离苦参总黄酮,二氯甲烷-甲醇梯度洗脱,TLC检查合并相同组分,得Fr. 1~Fr. 10共10个部分。Fr. 8部分甲醇重结晶得到白色针状晶体(2.59 g)。
2.1.2 Tri的结构鉴定白色针晶,微溶于甲醇,Molish反应呈紫色环,盐酸镁粉反应不显色,mp 140~141.5 ℃。UV光谱(MeOH)在309.5、364 nm处出现最大吸收。ESI-MS谱中,在m/z 447处可见 [M+1]+离子峰和m/z 284(M+-162葡萄糖基)碎片离子,表明相对分子质量为446,且为苷类化合物。经酸水解后,其糖部分经薄层色谱检识证明含有葡萄糖,推测其为含有葡萄糖的苷类化合物。结合1H-NMR谱及13C-NMR谱,推测其分子式为 C22H22O10,计算其不饱和度为12。1H-NMR (CD3COCD3) δ: 7.38 (1H,d,J = 9.4 Hz,H-1),6.92 (1H,s,H-7),6.78 (1H,dd,J = 9.4,2.4 Hz,H-2),6.59 (1H,d,J = 2.4 Hz,H-4),6.38 (1H,s,H-10),5.96 (1H,s,-OCH2O-),5.91 (1H,s,-O-CH2-O-),5.54 (1H,d,J = 7.6 Hz,H-11α),4.96 (1H,d,J = 7.6 Hz,H-1′),4.28 (2H,m,H-6),3.80~3.43 (7H,m,H-6α和糖上质子);13C-NMR (CD3COCD3) δ: 132.6 (C-1),111.2 (C-2),159.8 (C-3),106.2 (C-4),157.8 (C-4α),67.8 (C-6),40.6 (C-6α),119.2 (C-6β),105.2 (C-7),142.8 (C-8),148.4 (C-9),93.4 (C-10),154.8 (C-10α),79.5 (C-11α),115.8 (C-11β),101.2 (-O-CH2-O-),102.5 (C-1′),74.5 (C-2′),77.8 (C-3′),71.4 (C-4′),76.0 (C-5′),62.7 (C-6′)。以上数据与文献报道[14]的 (−)-maackiain-3- O-glucoside(三叶豆紫檀苷)数据基本一致,确定其为Tri。
2.2 TPC的制备 2.2.1 TPC的制备方法分别称取Tri和PC各10 mg置于10 mL锥形瓶中,加入5 mL丙酮,于40 ℃、50 r/min条件下恒温水浴磁力搅拌2 h,反应后将溶液置于梨形瓶中,恒温水浴40 ℃,50 r/min转速下旋转蒸发除去溶剂,真空干燥,即得。
2.2.2 TPC的评价方法评价指标采用药物复合率,测定方法为将药物与磷脂反应后溶液挥干再溶于二氯甲烷(该溶剂对药物不溶但可以溶解磷脂和PC),减压抽滤得到不溶的沉淀(即未反应的药物沉淀)干燥后称质量,按下式计算复合率。
复合率=W1/W=(W-W2)/W
W1为形成复合物的药物量,W2为未形成复合物的药物量,W为总投料量
2.2.3 正交试验优化TPC的处方以复合率为指标,按照“2.2.1”项制备步骤采用单因素考察法初步筛选TPC处方及工艺条件。反应溶剂选择了甲醇-二氯甲烷(1∶1)、甲醇、四氢呋喃、丙酮以及氯仿,结果丙酮为反应溶剂时复合率最高;分别在25~55 ℃每隔5 ℃考察反应温度的影响,结果40 ℃为宜。进一步研究发现,Tri质量浓度、反应时间、Tri与卵磷脂投料物质的量比例对复合率影响较大,故在单因素考察基础上,选择Tri与卵磷脂投料物质的量比(A)、反应物(Tri)质量浓度(B)、反应时间(C)为考察的因素,每个因素下设3个水平(表 1),按照L9(34) 表安排试验,结果进行直观分析和方差分析(表 1、2)。综合分析极差及方差分析结果,得到各因素对复合率影响的主次顺序为B>A>C,仅B因素具有显著性;优选最佳方案是A2B2C3,即Tri质量浓度为4 mg/mL,药物与卵磷脂投料物质的量比为1∶1.5,反应时间为3 h。按上述优选的处方制备3批TPC样品,测定复合率的平均值为(93.20±2.01)%,结果表明该制备工艺稳定可控。
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表 1 L9(34) 正交试验设计、结果及直观分析 Table 1 Design,results,and intuitive analysis of L9(34) orthogonal test |
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表 2 正交设计的方差分析 Table 2 Analysis of variance |
色谱条件[13]:色谱柱为Diamonsil C18柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流动相为甲醇-水(60∶40);检测波长为309 nm;柱温为30 ℃;进样量10 μL。该色谱条件下辅料不干扰主药的测定,HPLC图见图 1。Tri在31~310 μg/mL线性关系良好,回归方程为Y=8×106 X+37 028,R2=0.999 8。载药量测定时,取所制备的TPC-SMEDDS样品,于37 ℃恒温水浴振荡器中振荡24 h,3 000 r/min离心30 min,取上清液,用流动相稀释,经0.45 μm微孔滤膜滤过后,按上述方法测定。日内、日间精密度RSD均<2.15%,表明仪器精密度良好;稳定性试验RSD为0.72%,表明样品溶液10 h内稳定;重复性试验RSD为1.15%,表明本法重复性良好;加样回收率均>97.1%,RSD均小于2.0%。
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图 1 Tri对照品 (A)、TPC-SMEDDS样品 (B) 和空白辅料 (C) HPLC图 Fig. 1 HPLCof Tri reference substance (A),TPC-SMEDDS sample (B),and blank accessories (C) |
制备时先将乳化剂与助乳化剂按照质量比(Km)为1∶9、2∶8、3∶7、4∶6、5∶5、6∶4、7∶3、8∶2、9∶1混合,再将油相与乳化剂和助乳化剂质量之和按照1∶9~9∶1的比例混合,加入到具塞西林瓶中,37 ℃恒温水浴磁力搅拌5 min,使油相、乳化剂和助乳化剂充分混匀。
2.4.2 绘制三元相图确定空白SMEDDS自乳化区域考察了TPC在各种油相、乳化剂及助乳化剂等辅料中的溶解度,确定Tran HP为助乳化剂,蓖麻油、油酸乙酯及Capryol 90为油相,EL40、聚山梨酯(Tween)80及Labrasol为乳化剂,进一步考察不同组合的处方对自乳化效率的影响。结果油相-乳化剂-助乳化剂分别为Capryol 90-EL40-Tran HP和油酸乙酯-Tween 80-Tran HP自乳化效果较好为A级[即迅速分散乳化(时间≤1 min),形成澄清或微微泛蓝的微乳(乳滴粒径≤50 nm)];蓖麻油- EL40-Tran HP和油酸乙酯-EL40-Tran HP自乳化效果为B级[迅速分散乳化(时间≤1 min),形成蓝白色微乳(乳滴粒径为50~100 nm)]。挑选上述处方绘制三元相图。将筛选的油相、乳化剂、助乳化剂按照“2.4.1”项下制备SMEDDS。磁力搅拌下,向SMEDDS中缓慢加入10倍量去离子水,记录形成澄清或淡蓝色乳光液体的处方及比例,按油、乳化剂、助乳化剂的各自质量分数作为三元相图的一点,采用Origin 8.0软件绘制三元相图,结果见图 2。结果表明,图 2-A中Capryol 90-EL40-Tran HP和图 2-B中蓖麻油-EL40-Tran HP的自微乳区域面积较大,但实验中发现蓖麻油-EL40-Tran HP的凝胶区域较大,影响乳化效率,故选择Capryol 90-EL40- Tran HP进一步优化。
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图 2 空白SMEDDS三元相图 Fig. 2 Ternaryphasediagramof blank SMEDDS |
采用星点设计效应面法优化自微乳处方。主要考察油相用量(X1,30%~50%)和Km值(X2)对TPC-SMEDDS的饱和载药量(Y1)、液滴尺寸多分散性指数(PDI,Y2)及粒径(Y3)的影响,进行2因素5水平的星点设计,因素水平和实验结果见表 3。
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表 3 星点试验设计及测定结果 Table 3 Test results from CCD |
以Y1、Y2和Y3为因变量,采用Design Expert 8.0软件进行二次多项式回归,以拟合优度R2和置信度P作为模型判断标准,二次多项式拟合方程结果分别为Y1=−191.08+10.36+0.49 X2+0.08 X1X2-0.13 X12-0.23 X22,P=0.000 1<0.05,R2=0.957 9;Y2=6.15-0.30 X1+0.16 X2-0.004 X1X2-0.004 X12-0.001 X22,P=0.000 3<0.05,R2=0.957 0;Y3=245.31-12.18 X1+8.59 X2-0.33 X1X2+0.18 X12+0.36 X22,P=0.003 3<0.05,R2=0.839 9。分析各因素对响应值的影响,借助软件SPSS 11.0的优化功能,在最佳的效应值的前提下,通过响应面的重合叠加,选取较优的组合,3D响应面见图 3。
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图 3 3D响应面图 Fig. 3 3D response surface |
由图 3-A中,油相用量居中等水平时随着Km值增大载药量Y1也增大;图 3-B中,Km值对Y2基本无影响,随着油的用量的增加Y2则减小;图 3-C中,2因素在中心点附近时Y3值较小。综合考虑3个方程,Y1、Y2、Y3权重相同,以3者的综合评分(Y)=(Y1/Y1max+Y2/Y2max+Y3/Y3max)/3为指标,采用最速下降法得油相用量X1=43.65%,Km值X2=7.58,Y预测最大值为94.932%,Y1预测最大值为21.816 3 mg/g,95%的最优值预测区间为(17.72,25.92),Y2预测最大值为0.066,95%的最优值预测区间为(0,0.23),Y3预测最大值为24.374 9 nm,95%的最优值预测区间为(12.85,35.90)。
根据优化处方,制备3批TPC-SMEDDS样品进行处方验证,分别测定饱和载药量、PDI和平均粒径,结果3批TPC-SMEDDS样品的平均饱和载药量为(21.63±0.59)mg/g,平均PDI为0.071± 0.031,平均粒径为(24.84±0.40)nm;根据最优参数及二次多项式拟合方程计算得到的饱和载药量为21.82 mg/g,PDI为0.066,粒径为24.37 nm。结果预测值和真实值之间基本无差异,表明中心复合设计法可靠。为便于制备,载药量确定为20.00 mg/g(以TPC中Tri量计算)。
2.4.4 粒径分布及Zeta电位的测定取稀释50倍的自微乳适量,用马尔文粒径仪测定自微乳的粒径和Zeta电位,记录粒径及电位,结果见图 4。TPC- SMEDDS的平均粒径为(24.84±0.40)nm,PDI为0.071±0.310,Zeta电位为(−15.42±0.62)mV。
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图 4 粒径分布和Zeta电位图 Fig. 4 Particle size distribution and Zeta potential |
将按最佳工艺条件制备的3批TPC-SMEDDS样品于室温及4 ℃冰箱冷藏保存,分别于制备后第0、15、30、45、60天取样观察,测定电位、粒径、PDI以及载药量,考察稳定性。结果,自微乳在4 ℃条件下存放60 d,外观均匀,无絮凝和沉淀产生,Zeta电位及粒径、载药量基本不变。
2.5 Caco-2细胞渗透性研究 2.5.1 Tri定量测定色谱条件同“2.3”项。该条件下,辅料对主药测定不产生干扰,色谱图见图 5。
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图 5 HBSS溶液 (A)、Tri对照品 (B) 和Tri对照品+HBSS溶液 (C) 的HPLC图 Fig. 5 HPLCof HBSS (A),Tri reference substance(B),and HBSS + Tri reference substance (C) |
Tri在2.55~102.00 μg/mL线性关系良好,回归方程为Y=13.433 X+5.378,R2=0.999 5。日内和日间精密度RSD均小于3%,加样回收率在95.76%~104.87%,RSD小于2.0%,符合要求。
2.5.2 Caco-2细胞模型建立及单层验证培养基采用DMEM 13.4 mg/mL,含10%胎牛血清、1%非必须氨基酸、0.5%青霉素、0.5%链霉素,调pH至7.4。培养箱CO2浓度控制在5%,温度37 ℃。Caco-2接种(密度为1×106个/cm2)后隔天换液,14 d后每日换液,分别于6、14、21 d采用跨膜 电阻仪测定各孔跨膜电阻值(trans epithelial electrical resistance,TEER),倒置显微镜观察细胞形态。培养Caco-2细胞第6天的TEER达(325±19)Ω/cm2,第14天为(528±23)Ω/cm2、第21天为(673±27)Ω/cm2。可见,14 d时TEER值已经达到500 Ω/cm2,然而倒置显微镜观察细胞形态仍可见细胞空洞,直至21 d才完全融合形成致密均匀的细胞单层,因此选择Caco-2细胞培养21 d。第6天和第21天的细胞形态见图 6。
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图 6 生长6 d (A)、21 d (B) Caco-2细胞形态 (× 200) Fig. 6 Caco-2 cell morphology on 6 (A) and 21 d (B) (× 200) |
实验前弃去Trans well板中培养液,用37 ℃的PBS溶液洗涤2次,在培养板中加入HBSS,于细胞培养箱中孵育30 min。吸取200 μL的Tri、TPC、TPC-SMEDDS待测液分别置于AP面(apical,细胞绒毛面),0.8 mL的pH 7.4的HBSS溶液置于BL面(basolateral,基底面),CO2培养箱孵育。实验开始时,先测定药物初始浓度(C0),再分别于10、20、30、45、60、90、120、180 min 从接收室吸取接收液200 μL,同时补加200 μL空白接收液。HPLC分析,计算表观渗透系数(Papp,cm/s)。
Papp=(dQ/dt)/(A×C0)
Q为累积转运量,代表化合物在接收室的总量(μmol);dQ/dt为转运速率(μmol/s);C0为化合物在供给室的初始浓度(μmol/mL);A为聚碳酯膜的表面积(cm2)
每组实验重复3次,以HBSS溶液作空白,实验结果以x±s表示。统计学处理采用SPSS 19.0中的One-way ANOVA分析,TPC、TPC-SMEDDS组分别与Tri比较(采用LSD、S-N-K检验)P<0.05,表明转运存在显著差异。实验结束时再次测量TEER,以确定细胞单层完整性,Tri、TPC及TPC- SMEDDS随时间变化在Caco-2细胞中累积吸收转运结果见图 7。
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图 7 Caco-2细胞上的累积吸收转运 (x±s,n = 3) Fig. 7 Comulative absorption and transport rate in Caco-2 cells (x±s,n = 3) |
实验结束时TEER测量结果与实验前测量结果差异在10%以内,表明细胞单层完整性良好。测定结果表明,Tri自身的渗透性很差,Papp仅为2.45×10−7 cm/s;制成磷脂复合物后渗透性Papp为5.13×10−6 cm/s;联合采用磷脂复合物与自微乳技术后,Papp为1.847×10−5 cm/s。
3 讨论 3.1 自乳化实验条件选择本研究采用单因素考察法以自乳化效率为指标,研究了TPC-SMEDDS制剂的自乳化试验条件,如搅拌速度、稀释倍数等。结果表明,搅拌速度越快,TPC-SMEDDS乳化时间和粒径虽稍有降低,但没有显著性差异。且速度过快,亲水性表面活性剂会产生较多泡沫,故选50 r/min。随着稀释倍数的增加,乳化时间相应增加,粒径影响不大。考虑到空腹时正常成人的胃容量约50 mL,进餐后可达1.5 L,胃液体积约为口服微乳体积的50倍,故稀释倍数确定为50倍。同时考察了不同的乳化介质蒸馏水、人工胃液及人工肠液对乳化效率的影响,结果对乳化时间和乳滴的粒径无显著差异。由于制剂口服后应在胃肠道自发形成微乳,故本研究中均采用了37 ℃作为自微乳化考察温度。
3.2 自微乳中油相、乳化剂及助乳化剂的选择本研究筛选了TPC在各类油、表面活性剂以及助表面活性剂中的溶解度,结果助乳化剂Transcol HP对其溶解度明显高于其他辅料;肉豆蔻酸异丙酯对其溶解度太差,故以蓖麻油、油酸乙酯及Capryol 90为油相;RH 40黏度较大,故乳化剂选择EL40、Tween 80及Labrasol进一步开展自乳化效果研究。
3.3 Caco-2跨膜转运分析Caco-2细胞系来源于人的直肠癌,其结构和生化作用类似于人小肠上皮细胞,含有与小肠刷状上皮相关的酶系[15]。本研究基于Caco-2细胞考察了Tri、TPC、TPC-SMEDDS的Papp,结果Tri的Papp仅为2.45×10−5 cm/s,小于1×10−6 cm/s,表明Tri为小肠不良吸收的药物;制成磷脂复合物及磷脂复合物自微乳后的Papp都均明显优于原料药Tri,且与Tri比较均有显著性差异(P<0.05)。TPC、TPC- SMEDDS比较,联合磷脂复合物与自微乳2种技术的制剂比单纯磷脂复合物的技术有优越性,有显著性差异(P<0.05)。上述结果提示磷脂复合物及自微乳技术联用可以明显改善Tri的渗透系数,提高药物跨膜转运效率,提示可提高生物利用度。
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