中草药  2016, Vol. 47 Issue (14): 2412-2417
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忍冬根的化学成分与抗炎活性研究
王召平1,2, 朱姮2, 李岗2, 杨鹏3, 王晓1, 于金倩1     
1. 山东省中药质量控制技术重点实验室, 山东省分析测试中心, 山东 济南 250014 ;
2. 山东中医药大学, 山东 济南 250014 ;
3. 济南康森三峰生物工程技术有限公司, 山东 济南 250014
摘要: 目的 研究忍冬Lonicera japonica根中的化学成分及其抗炎活性。 方法 采用反复碱性硅胶柱色谱、Sephadex LH-20柱色谱、薄层色谱、制备液相色谱等方法进行分离纯化,并通过波谱学分析鉴定其化学结构;采用斑马鱼抗炎模型,测定分离所得部分单体成分的抗炎活性。 结果 从忍冬根95%乙醇提取物中分离得到14个化合物,并鉴定其结构为3, 13-dihydroxystemodan-2-one(1)、大黄酚(2)、palmarumycin CP23)、β-谷甾醇(4)、豆甾醇(5)、豆甾-4, 6, 8(14), 22-四烯-3-酮(6)、erythrinassinate D(7)、羊毛甾醇(8)、齐墩果酸-3-乙酸酯(9)、原儿茶醛(10)、胡萝卜苷(11)、(E)-3-(3, 4-二羟基苯亚甲基)-5-(3, 4-二羟基苯)-2(3H)-呋喃酮(12)、lomacarinoside B(13)、(2E, 6S)-8-(α-L-arabinopyranosyl-(1″→6')-β-D-glucopyranosyloxy)-2, 6-dimethyloct-2-eno-1, 2″-lactone(14)。 结论 化合物1为新化合物,化合物2367~913均为首次从该植物中分离得到;化合物910在100μg/mL质量浓度下表现出明显的抗炎活性。
关键词: 忍冬根     3, 13-dihydroxystemodan-2-one     大黄酚     palmarumycin CP2     齐墩果酸-3-乙酸酯     原儿茶醛     抗炎     斑马鱼    
Chemical constituents of Lonicera japonica roots and anti-inflammatory activity
WANG Zhao-ping1,2, ZHU Heng2, LI Gang2, YANG Peng3, WANG Xiao1, YU Jin-qian1     
1. Shandong Key Laboratory of TCM Quality Control Technology, Shandong Analysis and Test Center, Jinan 250014, China ;
2. Shandong University of Traditional Chinese Medicine, Jinan 250014, China ;
3. Kangsen Sanfeng Biological Engineering Technology Co., Ltd., Jinan 250014, China
Abstract: Objective To research the chemical composition from the roots of Lonicera japonica and their anti-inflammatory activities. Methods The compounds were isolated and purified by chromatography on silica gel column, Sephadex LH-20 column, preparative thin-layer, and semi-preparative HPLC, etc. Their structures were identified on the basis of spectroscopic data, and parts of the isolated compounds were tested for their anti-inflammatory activities against zebrafish. Results Fourteen compounds were isolated and elucidated as 3, 13-dihydroxystemodan-2-one (1), chrysophanol (2), palmarumycin CP2 (3), β-sitosterol (4), stigmasterol (5), stigmast-4, 6, 8(14), 22-tetraen-3-one (6), erythrinassinate D (7), lanosterin (8), 3-O-acetyloleanolic acid (9), protocatechuin aldehyde (10), daucosterol (11), (E)-3-(3, 4-dihydroxybenzylidene)-5-(3, 4-dihydroxyphenyl)-2(3H)-furanone (12), lomacarinoside B (13), and (2E, 6S)-8-(α-L-arabinopyranosyl-(1″→6')-β-D-glucopyranosyloxy)-2, 6-dimethyloct-2-eno-1, 2″-lactone (14). Conclusion Compound 1 is a new compound, and compounds 2, 3, 6, 79, and 13 are isolated from L. japonica for the first time. Compounds 9 and 10 show the significant anti-inflammatory activities at 100μg/mL.
Key words: roots of Lonicera japonica     3, 13-dihydroxystemodan-2-one     chrysophanol     palmarumycin CP2     3-O-acetyloleanolic acid     protocatechuic aldehyde     anti-inflammation     zebrafish    

忍冬根为忍冬科(Caprifoliaceae)植物忍冬Lonicera japonica Thunb.的干燥根。忍冬作为山东道地药材,是我国传统中药之一,其花作为金银花入药,茎作为忍冬藤入药[1]。现代药理研究表明,金银花具有抗菌[2]、抗病毒[3]、抗炎[4]、保肝[5]、抗氧化[6]等药理活性,临床上主要用于治疗温病发热、热毒血痢、痈肿疮疡、风湿热痹、关节红肿热痛等症[7]。忍冬根作为忍冬的植物组成部位却未曾开发利用,为了进一步扩大药用部位,本实验对忍冬根部位进行系统的成分研究,分离纯化得到14个化合物,分别鉴定为3, 13-dihydroxystemodan-2-one(1)、大黄酚(chrysophanol,2)、palmarumycin CP23)、β-谷甾醇(β-sitosterol,4)、豆甾醇(sti gmasterol,5)、豆甾-4, 6, 8(14), 22-四烯-3-酮[stigmast-4, 6, 8(14), 22-tetraen-3-one,6]、erythrinassinate D(7)、羊毛甾醇(lanosterin,8)、齐墩果酸-3-乙酸酯(3-O-acetyloleanolic acid,9)、原儿茶醛(protocatechuin aldehyde,10)、胡萝卜苷(daucosterol,11)、(E)-3-(3, 4-二羟基苯亚甲基)-5-(3, 4-二羟基苯)-2(3H)-呋喃酮[(E)-3-(3, 4-dihydroxybenzylidene)-5-(3, 4-dihydroxyphenyl)-2(3H)-furanone,12]、lomacarinoside B(13)、(2E, 6S)-8-(α-L-arabinopyranosyl-(1″→6′)-β-D-glucopyranosyloxy)-2, 6-dimethyloct-2-eno-1, 2″-lactone(14)。其中化合物1为新化合物,化合物2367913均为首次从该植物中分离。

1 仪器与材料

Bruker-400核磁共振波谱仪(瑞士布鲁克公司);Waters 600型高效液相色谱仪(美国Waters公司);普源L-3000系列高效液相色谱仪(北京普源精电科技有限公司);旋转蒸发器R-3(瑞士Buchi公司);WZZ-15自动旋光仪(上海光学仪器厂);Agilent 1200 RRLC-6410 QQQ-MS/MS质谱仪(美国Agilent公司);YRT-3型药物熔点仪(天津天大天发科技有限公司);YMC-PEAK ODS-A分析型色谱柱(250 mm×4.6 mm,5μm);YMC-PEAK ODS-A半制备型色谱柱(250 mm×10.0 mm,5μm);薄层硅胶GF254,柱色谱硅胶(200~300目,青岛海洋化工厂);SZX16型荧光显微镜及DP2-BSW图像采集系统(日本Olympus公司);Forma 3111型水套式CO2培养箱(美国Forma公司);斑马鱼养殖饲养设备(北京爱生科技公司);JS7系巨噬细胞荧光转基因斑马鱼(山东省科学院生物研究所药物筛选研究室);CuSO4(Sigma公司);HPLC用甲醇、乙腈为色谱纯(美国Tedia公司);HPLC用水为娃哈哈纯净水;提取分离用试剂乙醇、石油醚、醋酸乙酯、甲醇、二氯甲烷等均为分析纯。

忍冬根药材采购于山东临沂市平邑县,经山东中医药大学李佳教授鉴定为忍冬科忍冬属植物忍冬Lonicera japonica Thunb.的干燥根。

2 方法 2.1 提取与分离

干燥忍冬根18 kg,粉碎,95%乙醇回流提取3次,分别为2、2、1 h,提取液合并、浓缩,得乙醇提取物。乙醇提取物用纯净水复溶到5 L,依次用等体积石油醚(60~90℃)、醋酸乙酯、正丁醇萃取4次,分别合并每部分萃取液,减压浓缩干燥得石油醚浸膏A(86 g)和醋酸乙酯浸膏B(460 g)。A经硅胶柱色谱分离,以石油醚-醋酸乙酯100:0→0:100洗脱,得到A1~A18段。A5(石油醚-醋酸乙酯100:1,8 g)经硅胶柱色谱(石油醚-醋酸乙酯100:0→1:1)分为8段(A5a-A5h),其中A5d部分(石油醚-醋酸乙酯25:1,0.35 g)经Sephadex LH-20(二氯甲烷-甲醇1:1)得化合物2(13 mg)和3(8 mg)。A10部分(石油醚-醋酸乙酯15:1,13 g)经硅胶柱色谱(石油醚-醋酸乙酯100:1→1:1)分离,其中A10d2(石油醚-醋酸乙酯15:1,0.3 g)析晶,滤过、重结晶得化合物4(200 mg),A10e5(石油醚-醋酸乙酯10:1,0.1 g)重结晶得化合物5(35 mg),A10b2(石油醚-醋酸乙酯20:1,0.1 g)经Sephadex LH-20(二氯甲烷-甲醇1:1)得化合物6(18 mg),A10f3部分(石油醚-醋酸乙酯10:1,0.15 g)经Sephadex LH-20(二氯甲烷-甲醇1:1)得化合物7(5 mg)。A13部分(石油醚-醋酸乙酯10:1,6 g)经硅胶柱色谱(石油醚-醋酸乙酯100:0→0:100)、Sephadex LH-20(二氯甲烷-甲醇1:1)得化合物8(8.5 mg);B通过硅胶柱色谱(二氯甲烷-甲醇100:0→0:100)分为B1~B13段。B1部分(二氯甲烷-甲醇100:0,6.3 g)经硅胶柱色谱、Sephadex LH-20得化合物9(5 mg)。B3部分(二氯甲烷-甲醇100:1,17 g)经硅胶柱色谱(石油醚-醋酸乙酯100:0→1:1)分离,其中B3g4部分(二氯甲烷-甲醇50:1,3 g)重结晶得化合物1(30 mg)。B4部分(二氯甲烷-甲醇50:1,22 g)经逆流色谱,流动相为石油醚-醋酸乙酯-甲醇-水6:4:1:9,得到化合物10(8 mg)。B5部分(二氯甲烷-甲醇25:1,35 g)经硅胶柱色谱(二氯甲烷-甲醇100:0→0:100)分离,其中B5j(二氯甲烷-甲醇15:1,5 g)重结晶得化合物11(45 mg),B5a5b部分(二氯甲烷-甲醇15:1,0.15 g)经Sephadex LH-20(二氯甲烷-甲醇1:1)得化合物12(6 mg)。B8部分(二氯甲烷-甲醇10:1,40 g)经硅胶柱色谱(二氯甲烷-甲醇100:1→1:1)、Sephadex LH-20(二氯甲烷-甲醇1:1)、高效制备液相制备得化合物13(100 mg)、化合物14(15 mg)。

2.2 细胞活性研究 2.2.1 斑马鱼抗炎模型的培养[8]

JS7系巨噬细胞荧光转基因斑马鱼雌雄分开喂养,照明14 h、黑暗10 h交替进行,定时喂以人工颗粒状饵料和刚孵出的卤虫无节幼体。采卵时取健康性成熟的斑马鱼按雌雄1:1的比例放入交配缸内,次日9~10时获得受精卵。对受精卵进行消毒和洗涤后移入斑马鱼胚胎培养用水(含5.0 mmol/L NaCl、0.17 mmol/L KCl、0.4 mmol/L CaCl2、0.16 mmol/L MgSO4)中,28℃下控光培养。

2.2.2 不同药物对转基因斑马鱼抗炎活性研究

受精卵发育3 d时,体视显微镜下挑选正常的斑马鱼胚胎,移入6孔培养板中,每孔20枚,每组2个复孔,实验重复2次。分别加入不同质量浓度(1、10、100μg/mL)的10个化合物(化合物1368101214)溶液,加培养水至6.0 mL,阳性对照组加入3.6μg/mL阿司匹林,阴性对照组加入0.1% DMSO,加盖置于光照培养箱(28℃)让胚胎继续发育1 h。CuSO4避光处理斑马鱼1 h后,室温条件下用4%多聚甲醛(PFA)固定1 h,清除4% PFA并使用PBST清洗。另设空白对照组、CuSO4对照组,空白对照组、CuSO4对照组斑马鱼发育3 d时,使用0.1% DMSO处理,随后置于光照培养箱(28℃)让胚胎继续发育1 h后,空白对照组不添加20μmol/L的CuSO4溶液;CuSO4对照组添加20μmol/L的CuSO4溶液,继续在28℃条件下避光培养。1 h后,利用4% PFA在室温条件下将其固定。固定1 h后去除PFA,并使用磷酸盐吐温缓冲液(PBST)清洗。

3 结果 3.1 结构鉴定

化合物1:白色粉末。[α]D20 +57.5°(c 0.2, CH2Cl2)。mp 159.1~161.2℃。(−) HR-ESI-MS给出准分子离子峰m/z 319.235 1 [M-H](理论值320.235 3,C20H32O3),确定分子式为C20H32O3,不饱和度为5。红外光谱数据包括3 464, 2 952, 2 857, 1 683, 1 445, 1 212, 1 077 cm−1,其中3 464和1 683 cm−1说明化合物结构中含有羟基和羰基。

1H-NMR (400 MHz, CDCl3)显示该化合物在低场区有连氧氢信号δH 3.83 (1H, s),在高场区有4个甲基信号δH 1.18 (3H, s), 1.15 (3H, s), 0.88 (3H, s)和0.72 (3H, s)(表 1)。13C-NMR结合HSQC图谱显示20个碳信号,其中包括1个羰基碳(δC 212.0)、2个连氧碳(δC 82.8, 72.4)和4个甲基碳(δC 30.3, 28.0, 16.4, 15.7)。上述官能团中仅羰基不饱和度为1,表明化合物1为四环结构。以上波谱数据与已知的二萜类化合物stemodinone[9]比较相似,不同的是化合物1在C-3位置连有-OH取代基。HMBC谱图(图 1)中的相关进一步验证了上述推断:从δH 3.83 (H-3)与δC 45.3 (C-5)、30.3 (C-18)、16.4 (C-19)的相关信号,δH 2.14 (H-5)与δC 82.8 (C-3), 30.3 (C-18), 23.6 (C-6), 16.4 (C-19)的相关信号,δH1.18 (H3-18)与δC 82.8 (C-3), 45.3 (C-5), 16.4 (C-19)的相关信号,δH0.72 (H3-19)与δC82.8 (C-3), 45.3 (C-5), 30.3 (C-18)的相关信号可以确定C-3位连有-OH取代;通过NOESY谱中照射δH 3.83 (H-3)信号发现δH 1.18 (H3-19)有增益,说明H-3为β构型,OH为α构型(图 1)。因此化合物1的化学结构确定为3, 13-dihydroxystemodan-2-one。经Scifinder数据库检索为新化合物。

表 1 化合物1的波谱数据 Table 1 1H-NMR and 13C-NMR data of compound 1 (400 MHz, CDCl3)

图 1 化合物1的结构及重要HMBC(→)相关 Fig.1 Structure and key HMBC correlations (→) of compound 1

化合物2:橙红色粉末,ESI-MS: m/z 253.2 [M-H](C15H10O4);1H-NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 12.14 (1H, s, 1-OH), 7.11 (1H, s, H-2), 7.66 (1H, s, H-4), 7.84 (1H, dd, J=8.4, 1.2 Hz, H-5), 7.82 (1H, dd, J=8.4, 1.2 Hz, H-6), 7.26 (1H, m, H-7), 12.03 (1H, s, 8-OH), 2.47 (3H, s, CH3);13C-NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 22.3 (C-CH3), 162.3 (C-1), 124.6 (C-2), 149.4 (C-3), 121.4 (C-4), 119.9 (C-5), 136.9 (C-6), 124.4 (C-7), 162.8 (C-8), 192.6 (C-9), 182.1 (C-10), 133.3 (C-4a), 115.9 (C-8a), 113.8 (C-9a), 133.7 (C-10a)。以上数据与文献报道基本一致[10],故鉴定化合物2为大黄酚。

化合物3:黄白色油状物质,ESI-MS: m/z 317.3 [M-H](C20H14O4);1H-NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 2.49 (2H, t, J=2.4 Hz, H-2), 2.85 (2H, t, J=2.4 Hz, H-3), 7.54 (2H, d, J=5.2 Hz, H-4′, 5′), 7.46 (2H, dd, J=7.6, 5.2 Hz, H-3′, 6′), 7.11 (1H, d, J=0.8 Hz, H-6), 6.98 (2H, d, J=7.6 Hz, H-2′, 7′), 7.64 (1H, t, J=8.0 Hz, H-7), 7.45 (1H, dd, J=7.6, 0.8 Hz, H-8), 12.44 (1H, s, -OH);13C-NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 98.4 (C-1), 29.4 (C-2), 34.1 (C-3), 203.4 (C-4), 162.5 (C-5), 116.7 (C-6), 137.2 (C-7), 119.6 (C-8), 115.4 (C-4a), 134.2 (C-4a′), 140.8 (C-8a), 113.4 (C-8a′) 147.4 (C-1′, 8′), 109.4 (C-2′, 7′), 127.6 (C-3′, 6′), 120.9 (C-4′, 5′)。以上数据与文献报道基本一致[11],故鉴定化合物3为palmarumycin CP2

化合物4:白色粉末,ESI-MS: m/z 413.5 [M+H]+(C29H50O);1H-NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 5.35 (1H, s, H-6), 3.52 (1H, brs, H-3), 1.01 (3H, s, 18-CH3), 0.68 (3H, s, 19-CH3), 0.93 (3H, d, J=4.0 Hz, 21-CH3), 0.84 (6H, m, 26, 27-CH3), 0.81 (3H, s, 29-CH3);13C-NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 36.5 (C-1), 29.2 (C-2), 71.8 (C-3), 45.9 (C-4), 140.8 (C-5), 121.7 (C-6), 31.7 (C-7), 31.9 (C-8), 50.2 (C-9), 36.1 (C-10), 28.2 (C-11), 39.8 (C-12), 42.3 (C-13), 56.8 (C-14), 26.1 (C-15), 29.6 (C-16), 56.1 (C-17), 11.7 (C-18), 19.8 (C-19), 37.0 (C-20), 19.4 (C-21), 33.9 (C-22), 24.3 (C-23), 37.3 (C-24), 19.0 (C-25), 11.9 (C-26), 23.1 (C-27), 21.1 (C-28), 18.8 (C-29)。以上数据与文献报道基本一致[12],故鉴定化合物4为β-谷甾醇。

化合物5:白色粉末,ESI-MS: m/z 413.6 [M+H]+(C29H48O);1H-NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 0.68 (3H, s, H-18), 0.78 (3H, s, H-27), 0.79 (3H, s, H-19), 0.81 (3H, s, H-29), 0.83 (3H, s, H-26), 1.01 (3H, brs, H-21), 3.35 (1H, m, H-3α), 5.13 (1H, m, H-22), 5.30 (1H, d, J=4.0 Hz, H-6);13C-NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 37.3 (C-1), 31.8 (C-2), 71.8 (C-3), 41.3 (C-4), 140.7 (C-5), 121.7 (C-6), 31.8 (C-7), 31.9 (C-8), 50.2 (C-9), 36.6 (C-10), 21.2 (C-11), 39.8 (C-12), 42.3 (C-13), 56.9 (C-14), 24.3 (C-15), 29.1 (C-16), 56.1 (C-17), 11.9 (C-18), 19.4 (C-19), 40.5 (C-20), 21.1 (C-21), 138.3 (C-22), 129.2 (C-23), 51.2 (C-24), 31.7 (C-25), 19.0 (C-26), 21.2 (C-27), 25.4 (C-28), 12.0 (C-29)。以上数据与文献报道基本一致[12],故鉴定化合物5为豆甾醇。

化合物6:黄白色油状物质,ESI-MS: m/z 405.3 [M-H](C29H42O);1H-NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 0.82 (3H, t, J=6.8 Hz, 29-CH3), 0.85 (3H, d, J=6.8 Hz, 26-CH3), 0.94 (3H, d, J=6.8 Hz, 27-CH3), 0.96 (3H, s, 21-CH3), 1.00 (3H, s, 19-CH3), 1.05 (3H, d, J=6.8 Hz, 18-CH3), 5.23 (2H, m, H-22, 23), 5.73 (1H, s, H-4), 6.02 (1H, d, J=7.6 Hz, H-6), 6.62 (1H, d, J=7.6 Hz, H-7);13C-NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 34.1 (C-1), 34.2 (C-2), 199.5 (C-3), 123.0 (C-4), 164.4 (C-5), 124.5 (C-6), 134.0 (C-7), 124.4 (C-8), 42.9 (C-9), 44.0 (C-10), 18.9 (C-11), 29.7 (C-12), 36.7 (C-13), 156.1 (C-14), 27.7 (C-15), 35.6 (C-16), 55.7 (C-17), 21.2 (C-18), 19.9 (C-19), 39.3 (C-20), 17.6 (C-21), 132.6 (C-22), 135.0 (C-23), 44.4 (C-24), 19.0 (C-25), 33.1 (C-26), 19.7 (C-27), 25.4 (C-28), 16.7 (C-29)。以上数据与文献报道基本一致[13],故鉴定化合物6为豆甾-4, 6, 8(14), 22-四烯-3-酮。

化合物7:白色粉末,ESI-MS: m/z 557.5 [M-H](C36H62O4);1H-NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 0.87 (3H, t, J=6.8 Hz, 26″-CH3), 1.10~1.48 [48H, m, (CH2)24], 3.93 (3H, s, 4-OMe), 4.20 (2H, t, J=6.4 Hz, -OCH2CH2R), 5.82 (1H, brs, -OH), 6.31 (1H, d, J=16.0 Hz, H-2′), 6.92 (1H, d, J=16.0 Hz, H-5), 7.03 (1H, m, H-2), 7.08 (1H, m, H-6), 7.56 (1H, d, J=16 Hz, H-1′);13C-NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 127.3 (C-1), 115.7 (C-2), 144.6 (C-3, 4, 1′), 114.7 (C-5), 123.0 (C-6), 109.3 (C-2′), 169.3 (C-3′), 64.6 (C-1″), 28.8 (C-2″), 26.0 (C-3″), 29.7 (C-4″~C-23″), 31.9 (C-24″), 22.7 (C-25″), 14.1 (C-26″), 59.6 (4-OMe)。以上数据与文献报道基本一致[14],故鉴定化合物7为erythrinassinate D。

化合物8:白色粉末,ESI-MS: m/z 425.7 [M-H](C30H50O);1H-NMR (400 MHz, CDCl3) δ: 3.25 (1H, m, H-3), 0.81 (3H, s, H-18), 0.98 (3H, s, H-19), 0.88 (3H, d, J=6.6 Hz, H-21), 5.07 (1H, m, H-24), 1.60 (3H, brs, H-26), 1.68 (3H, brs, H-27), 0.85 (3H, s, H-28), 1.00 (3H, s, H-29), 0.69 (3H, s, H-30);13C-NMR (100 MHz, CDCl3) δ: 36.4 (C-1), 28.0 (C-2), 79.0 (C-3), 38.9 (C-4), 50.9 (C-5), 21.0 (C-6), 28.2 (C-7), 134.4 (C-8), 130.9 (C-9), 37.1 (C-10), 18.3 (C-11), 25.5 (C-12), 44.5 (C-13), 49.8 (C-14), 30.9 (C-15), 29.7 (C-16), 50.4 (C-17), 15.8 (C-18), 18.6 (C-19), 36.3 (C-20), 19.1 (C-21), 35.6 (C-22), 25.7 (C-23), 125.3 (C-24), 134.4 (C-25), 24.9 (C-26), 17.6 (C-27), 24.3 (C-28), 27.9 (C-29), 15.4 (C-30)。以上数据与文献报道基本一致[15],故鉴定化合物8为羊毛甾醇。

化合物9:白色粉末,ESI-MS: m/z 497.7 [M-H](C32H50O4);1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ: 4.40 (1H, dd, J=2.8, 4.0 Hz, H-3α), 5.17 (1H, t, J=4.0 Hz, H-12), 2.77 (1H, dd, J=2.9, 4.0 Hz, H-18), 0.73 (3H, s, 23-CH3), 0.82 (3H, s, 24-CH3), 0.88 (3H, s, 25-CH3), 1.05 (3H, s, 26-CH3), 1.07 (3H, s, 27-CH3), 0.90 (3H, s, 28-CH3), 0.99 (3H, s, 29-CH3), 1.02 (3H, s, 30-CH3);13C-NMR (100 MHz, DMSO-d6) δ: 38.7 (C-1), 23.1 (C-2), 79.8 (C-3), 37.4 (C-4), 54.4 (C-5), 17.7 (C-6), 32.1 (C-7), 39.9 (C-8), 46.7 (C-9), 37.1 (C-10), 22.8 (C-11), 121.3 (C-12), 143.7 (C-13), 41.2 (C-14), 27.1 (C-15), 22.5 (C-16), 45.6 (C-17), 40.7 (C-18), 45.4 (C-19), 30.3 (C-20), 33.2 (C-21), 31.2 (C-22), 27.65 (C-23), 16.7 (C-24), 14.9 (C-25), 16.5 (C-26), 25.4 (C-27), 178.5 (C-28), 32.7 (C-29), 23.3 (C-30), 20.9 (Ac), 170.0 (CO)。以上数据与文献报道基本一致[16],故鉴定化合物9为齐墩果酸-3-乙酸酯。

化合物10:灰白色粉末,ESI-MS: m/z 137.1 [M-H](C7H6O3);1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ: 9.70 (1H, s, 7-CHO), 7.23 (1H, brs, H-2), 6.91 (1H, d, J=8.0 Hz, H-5), 7.28 (1H, m, H-6);13C-NMR (100 MHz, DMSO-d6) δ: 129.2 (C-1), 114.8 (C-2), 146.4 (C-3), 152.8 (C-4), 115.9 (C-5), 124.9 (C-6), 191.4 (C-7)。以上数据与文献报道基本一致[17],故鉴定化合物10为原儿茶醛。

化合物11:白色粉末,mp 298~300℃,难溶于一般有机溶剂,Libermann-Burchard反应阳性,Molish反应阳性,与β-胡萝卜苷对照品在多种溶剂系统展开进行TLC对照,喷硫酸-乙醇显色剂,105℃下加热显色,样品斑点的Rf值与β-胡萝卜苷对照品相同,且均为紫红色,且混合后熔点不下降,故鉴定化合物11为β-胡萝卜苷。

化合物12:橙色油状物,ESI-MS: m/z 313.1 [M+H]+(C17H12O6);1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ: 9.46 (4H, brs, -OH), 7.10 (1H, s, H-3), 7.22 (1H, d, J=5.2 Hz, H-6), 6.83 (1H, d, J=8.0 Hz, H-9), 7.12 (1H, s, H-11), 7.23 (1H, d, J=5.2 Hz, H-13), 6.86 (1H, d, J=8.0 Hz, H-16), 7.20 (2H, brs, H-10, 17);13C-NMR (100 MHz, DMSO-d6) δ: 170.0 (C-1), 121.6 (C-2), 98.6 (C-3), 155.5 (C-4), 119.8 (C-5), 112.7 (C-6), 146.2 (C-7), 148.5 (C-8), 116.5 (C-9), 117.9 (C-10), 134.4 (C-11), 126.9 (C-12), 117.7 (C-13), 148.5 (C-14), 149.2 (C-15), 116.7 (C-16), 124.4 (C-17)。以上数据与文献报道基本一致[18],故鉴定化合物12为(E)-3-(3, 4-二羟基苯亚甲基)-5-(3, 4-二羟基苯)-2(3H)-呋喃酮。

化合物13:白色粉末,ESI-MS: m/z 359.1 [M+H]+(C16H22O9);1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ: 7.26 (1H, s, H-2), 2.95 (1H, m, H-4), 2.07 (1H, m, H-5a), 1.45 (1H, m, H-5b), 1.84 (1H, m, H-7), 3.89 (1H, s, H-8), 5.12 (1H, s, H-10), 1.71 (1H, brs, H-11), 0.98 (1H, d, J=8.0 Hz, H-12), 4.49 (1H, d, J=8.0 Hz, H-1′), 2.97 (1H, m, H-2′), 3.16 (1H, m, H-3′), 3.04 (1H, m, H-4′), 3.14 (1H, m, H-5′), 3.89 (1H, m, H-6a′), 3.44 (1H, m, H-6b′);13C-NMR (100 MHz, DMSO-d6) δ: 112.6 (C-1), 151.0 (C-2), 167.4 (C-3), 31.2 (C-4), 42.2 (C-5), 45.2 (C-7), 72.6 (C-8), 96.2 (C-10), 41.0 (C-11), 13.9 (C-12), 99.1 (C-1′), 73.6 (C-2′), 77.2 (C-3′), 70.6 (C-4′), 77.8 (C-5′), 61.6 (C-6′)。以上数据与文献报道基本一致[19],故鉴定化合物13为lomacarinoside B。

化合物14:白色粉末,ESI-MS: m/z 461.2 [M-H](C21H34O11);1H-NMR (400 MHz, DMSO-d6) δ: 6.68 (1H, s, H-3), 2.13 (1H, m, H-4β), 1.47 (1H, m, H-6), 1.35 (2H, m, H-5, 7), 3.48 (1H, s, H-8), 3.98 (1H, d, J=8.2 Hz, H-9), 2.90 (1H, brs, H-10), 3.10 (1H, m, H-11), 2.81 (1H, brs, H-12), 4.12 (1H, d, J=8.2 Hz, H-14α), 3.17 (1H, m, H-14β), 4.31 (1H, d, J=8.2 Hz, H-15), 4.90 (1H, m, H-16), 3.61 (1H, s, H-17), 3.69 (1H, s, H-18), 3.75 (1H, d, J=8.2 Hz, H-19α), 2.24 (1H, m, H-19α), 3.51 (1H, m, H-19β), 1.76 (3H, s, H-20), 0.92 (3H, s, H-21);13C-NMR (100 MHz, DMSO-d6) δ: 166.9 (C-1), 127.6 (C-2), 142.45 (C-3), 25.0 (C-4), 35.3 (C-5), 29.7 (C-6), 34.6 (C-7), 68.0 (C-8), 102.4 (C-9), 73.9 (C-10), 77.1 (C-11), 72.1 (C-12), 75.8 (C-13), 70.2 (C-14), 102.0 (C-15), 72.7 (C-16), 71.2 (C-17), 69.0 (C-18), 66.9 (C-19), 12.9 (C-20), 25.5 (C-21)。以上数据与文献报道基本一致[20],故鉴定化合物14为(2E, 6S)-8-(α-L-arabinopyranosyl-(1″→6′)-β-D-glucopyranosyloxy)-2, 6-dimethyloct-2-eno-1, 2″-lactone。

3.2 抗炎活性

对化合物1368101214进行抗炎活性研究。荧光显微镜下观察巨噬细胞炎症反应,计算炎症细胞数量,统计样品对炎症反应的影响,并观察胚胎死亡或畸形情况。各个化合物的抗炎活性见表 2

表 2 化合物对斑马鱼炎症的影响 Table 2 Effects of compounds against zebrafish inflammation

结果表明,当质量浓度为1、10μg/mL时,所有化合物均未表现出抗炎活性;当质量浓度为100μg/mL时,化合物910表现出明显的抗炎活性,其他化合物均未表现出抗炎活性。

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