中草药  2016, Vol. 47 Issue (11): 1903-1907
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马兜铃酸Ⅰ致大鼠肾损伤后血清miRNA差异表达的研究
张良1,2, 杨召聪1,2, 顾亚琴1,2, 钱知知1,2, 许立1,2     
1. 南京中医药大学药学院, 江苏 南京 210023 ;
2. 江苏省中药药效与安全性评价重点实验室, 江苏 南京 210023
摘要: 目的 筛选马兜铃酸Ⅰ(AAI)致大鼠肾损伤后血清中差异表达的微小RNA(micro RNA,miRNAs),为阐明miRNAs调控马兜铃酸肾病的机制研究提供靶标并奠定研究基础。 方法 SD雄性大鼠随机分为对照组及AAI(2.25 mg/kg)组,连续ip给药14 d造成肾损伤模型后,对大鼠肾脏进行HE染色观察肾损伤程度。利用miRNAs芯片技术寻找AAI组及对照组大鼠血清中差异表达的miRNAs,预测靶基因,采用实时定量PCR(qRT-PCR)验证芯片结果的可靠性,并对部分结果进行信号通路分析。 结果 HE染色显示AAI组大鼠肾脏出现不同程度的病变;miRNAs芯片结果显示有5个miRNAs(miR-10a-3p、miR-207、miR-3594-3p、miR-874-3p、miR-9a-3p)表达明显上调,无明显下调的miRNAs,并预测Rhebl1、Usp10等16种基因为差异表达的miRNAs靶基因;qRT-PCR验证结果与芯片结果基本一致;信号通路分析结果显示MAPK信号通路等相关性较大。 结论 芯片分析得到的差异表达的miRNAs可能与AAI致肾毒性机制相关,为进一步深入研究特定miRNAs的调控机制提供新的靶点,并为后期生物信息学层次的研究提供有效依据。
关键词: 马兜铃酸Ⅰ     肾损伤     微小RNA     靶基因     表达差异     马兜铃酸肾病    
Study on differential expression of miRNA in serum of rats after renal injury induced by aristolochic acid I
ZHANG Liang1,2, YANG Zhao-cong1,2, GU Ya-qin1,2, QIAN Zhi-zhi1,2, XU Li1,2     
1. School of Pharmacy, Nanjing University of Chinese Medicine, Nanjing 210023, China ;
2. Jiangsu Key Laboratory for Pharmacology and Safety Evaluation of Chinese Materia Medica, Nanjing 210023, China
Abstract: Objective To screen the miRNA differential expression profile in serum of rats after renal injury induced by aristolochic acid I, (AAI) to identify the target of miRNA in the mechanism of aristolochic acid nephropathy (AAN), and to make further study on the mechanism of AAN. Methods Eighteen male SD rats were randomly divided into two groups, control group and AAI group (2.25 mg/kg). Rats were ip injected with AAI once daily for 14 d. On day 14, blood collected was used for the determination of miRNA in serum by miRNA microarray; Renal pathological changes were examined by HE staining. The miRNA that expressed significantly different would be verified by real time quantitative PCR (qPT-PCR). Target genes were predicted using bioinformatics as well as Pathway analysis did. Results HE staining revealed that kidneys were damaged with different degrees. By significance analysis of microarray based on microarray screening, significantly different expression of five miRNA (miR-10a-3p, miR-207, miR-3594-3p, miR-874-3p, and miR-9a-3p) which were up-regulated were obtained, while there were no miRNAs which were down-regulated. qPT-PCR approved the results as well. It was suggested that 16 genes, such as Rhebl1 and Usp10, might be the target genes. Pathway analysis showed a greater correlation between MAPK signaling pathways. Conclusion The differential expressed miRNAs obtained by gene analysis might be related with AAI and further studies on the mechanism of some miRNA would be a new target of gene therapy and provide an effective basis for the further studies of bioinformatics.
Key words: aristolochic acid I     renal injury     miRNA     target gene     differential expression     aristolochic acid nephropathy    

马兜铃酸Ⅰ(aristolochic acid Ⅰ,AAI)是马兜铃酸(aristolochic acid,AA)的主要毒性成分,长期服用含此类物质的中药可导致马兜铃酸肾病(aristolochic acid nephropathy,AAN)的发生[1-2],很多国家现已采取相应政策来管理含此类成分的中药,但仍有部分群体不恰当的服用含AA的中药,AAN病例还时有发生,阐明AAI致肾毒性的发病机制仍具有重要意义。

Micro RNAs(miRNAs)是一类在生物体内广泛存在的长度约22 nt的小分子非编码RNA,它可以通过与靶基因mRNA的靶位点结合,抑制蛋白的合成或诱导该基因mRNA的降解,从而参与基因的表达调控[3]。目前miRNAs功能涉及到生物体的干细胞分化、分子免疫机制、细胞内信号转导、肿瘤发生及各种疾病和病毒感染等[4-6]。已有研究显示,miRNAs与AA的基因毒性[7]、肾近曲小管上皮细胞的周期阻滞[8]等过程密切相关。本课题组前期研究发现大鼠给予AAI 2.25 mg/kg剂量条件下,肾脏就已出现明显的病变[9]。本研究将采用miRNAs芯片法筛选出AAI致大鼠肾损伤后血清中表达明显发生变化的miRNAs,并预测相关靶基因,对部分miRNAs进行信号通路分析,从分子水平探讨AAN的发病机制。

1 材料 1.1 动物

8 周龄SD大鼠18只,清洁级,体质量220~250 g。合格证号SCXK(浙)2008-0033,购自浙江省实验动物中心。分笼饲养,周围环境通风,温度22~25 ℃、湿度50%~60%,动物实验操作严格按照《江苏省实验动物管理办法》规定执行。

1.2 药品与试剂

AAI(质量分数≥98%,批号20130201),河南省科技医药研究所;Trizol试剂(美国Life Technologies公司);氯仿(成都科龙化工试剂厂);异丙醇(南京化学试剂有限公司);DEPC水(上海碧云天生物技术研究所);逆转录试剂盒(上海生工生物工程有限公司);PolyAcryl Carrier(美国MRC公司);Quanti Fast SYBR Green PCR kit(德国Qiagen公司);所有引物由上海生工生物工程有限公司提供。

1.3 主要仪器

荧光定量PCR仪(美国Bio-rad公司);梯度PCR仪(美国Applied Biosysterms公司);多功能酶标仪(美国BioTek公司);低温离心机(德国Eppendorf);石蜡包埋机(日本樱花Tissue-TEK);切片机(美国Thermo公司)。

2 方法 2.1 肾损伤模型的制备

18 只大鼠随机分为对照组(10%二甲基亚砜+20%聚乙二醇600+70%生理盐水)和AAI组(2.25 mg/kg)[10]。大鼠于笼中适应性喂养3 d,自由进水,连续ip给药14 d,末次给药后禁食不禁水12 h,颈总动脉取全血6 mL,3 000 r/min离心后取血清,冻存备用;处死大鼠,迅速摘除肾脏,用PBS漂洗后,一侧肾脏放入10%甲醛中固定,用于病理检查分析,另一侧肾脏于液氮中保存,用于其他检测。

2.2 病理组织固定、切片及HE染色

取肾组织,切成小块浸泡在4%中性甲醛溶液中3 d;用蒸馏水洗涤组织块后放入70%乙醇中过夜;经脱水、透明、石蜡包埋、切片后,用多聚赖氨酸封片于玻璃载玻片上,进行苏木素伊红(HE)染色,光镜下观察AAI对大鼠肾组织损伤的情况。

2.3 总RNA的提取和芯片检测

对照组及AAI组各随机取3例样本的大鼠血清,采用Trizol法提取总RNA,其样本采用琼脂糖凝胶电泳进行质控分析,分光光度法进行定量分析。分离出的miRNAs,基于μParaflorTM微流体miRNAs检测探针进行实验。取RNA样品5~8 μg,进行靶标制备,在总RNA3’端用Poly A聚合酶加上poly A尾,并用于荧光标记。杂交反应在μParaflo微流体芯片上过夜进行。RNA与相应探针杂交后,与标记特异性结合的Hy3染料在微流体芯片上循环流动进行染色。利用激光扫描仪(Axon GenePix 4000B,Molecular Device)采集杂交图像,并使用GenePix Pro 6.0图像分析软件进行图像数字化转换,并使用LOWESS过滤进行信号归一化。计算两种检测信号的比值和t检验的P值,以P<0.05为差异有统计学意义,比值>1.5为显著表达差异。整个杂交和分析实验由上海康成生物公司完成,合同编号H1311169。

2.4 靶基因预测

根据microRNA生物信息学数据库miRBase(http://www.mirbase.org/)、miRDB(http://mirdb.org/ miRDB/)、miRanda(http://www.microrna.org- microrna/home.do)对miRNAs芯片中5个表达有明显差异的miRNAs进行检索,将结果导出并比对,将3个数据库中共有的基因作为核心靶基因。

2.5 miRNAs的qRT-PCR验证

miRNAs的反转录体系为20 μL,其中2×miRNA RT Solution mix 10 μL,miRNA RT Enzyme mix 2 μL,Total RNA/micro RNA 2 μg/100 ng,RNase-free water。反转录程序:37 ℃、60 min,85 ℃、5 min,4 ℃速冷。qRT-PCR反应体系20 μL,其中1 μL模板(逆转录产物),2 μL引物混合物(10 μmol/L),10 μL 2×SYBR green,7 μL水。反应条件:95 ℃、5 min,95 ℃、30 s,60 ℃、30 s,40个循环。以U6为内参基因,以2−ΔΔCtCt值代表循环阈值)表示基因的表达量,部分引物序列见表 1

表 1 用于miRNAs real-time PCR的部分引物 Table 1 Primers used to perform real-time PCR of miRNAs

2.6 部分miRNAs的信号通路分析

根据KEGG(Kyoto Encyclopedia of Gene and Genomes)数据库(http://www.genome.jp/kegg/),对芯片检测出的miRNAs靶基因进行信号通路显著性分析。分析结果采用Fisher精确检验和卡方检验进行统计,P<0.05,FDR<0.05则认为差异具有统计学意义。

2.7 统计分析

采用GraphPad Prism 6软件进行相关统计分析,组间数据采用单因素方差分析,数据以x±s表示。

3 结果 3.1 AAI致大鼠肾损伤的病理变化

连续给药14 d后,取大鼠肾脏进行HE染色,光学显微镜下观察其病理改变。对照组大鼠肾脏肾小管未见水肿,间质血管未见充血和炎细胞浸润,肾皮质内肾小球未见充血,肾小球无硬化现象;AAI组肾脏肾小管上皮细胞轻度水样变性,间质血管轻度充血,偶见炎细胞浸润现象,已出现明显病变。结果见图 1。本课题组前期研究[9]显示,2.25 mg/kg AAI连续ip给药14 d后,大鼠血清中肌酐(Cr)、尿素氮(BUN)水平明显升高(P<0.05);结合本实验结果说明2.25 mg/kg AAI可造成大鼠肾损伤。

图 1 AAI给药14 d后大鼠肾脏组织病理变化 Fig.1 Pathological changes in kidney tissue of rats after 14 d of AAI administration

3.2 miRNAs芯片检测结果

AAI致大鼠肾损伤后,利用miRNAs芯片对对照组和AAI组大鼠血清进行检测,与对照组血清相比,miRNAs芯片筛选出5个差异表达明显上调的miRNAs,分别是miR-10a-3p、miR-207、miR-3594-3p、miR-874-3p、miR-9a-3p,表达变化见图 2;此次芯片检测中无显著下调的miRNAs。

图 2 大鼠血清中差异表达显著上调的miRNAs Fig.2 miRNAs with significant up-regulation of differential expression in serum of rats

3.3 qRT-PCR验证

以U6为内参对芯片筛选出的差异表达的miRNAs进行qRT-PCR验证,记录Ct值,使用2−ΔΔCt法计算结果并统计,结果显示与对照组相比,miR-10a-3p、miR-207、miR-3594-3p表达均明显上调,miR-874-3p、miR-9a-3p表达呈升高趋势,如图 3所示,说明qRT-PCR结果与miRNAs芯片结果基本一致,本研究的芯片结果基本真实可靠。

图 3 各miRNA的qRT-PCR检测结果 Fig.3 Determination of qRT-PCR in each miRNA

3.4 靶基因预测结果

对芯片筛选出的差异表达的5个miRNAs,通过miRBase、miRDB、miRanda 3种靶基因预测数据库预测该5种miRNAs的靶基因,选出在3种数据库中出现的基因作为潜在靶基因,结果见表 2

表 2 miRNAs的靶基因预测 Table 2 Target gene prediction of miRNAs

3.5 miRNAs的信号通路分析

根据预测出的靶基因,对其进行信号通路分析,AAI组大鼠与对照组相比较,差异miRNAs参与了多个信号通路的调节,富集度较高的为过氧化物酶体(rno04146)、MAPK信号通路(rno04010)、多巴胺能突触(rno04728)、黏蛋白型-O-多糖生物合成(rno00512)、酮体的合成与降解(rno00072)等途径,见图 4

图 4 miRNA的Pathway分析 (部分) Fig.4 Pathway analysis of miRNA (part)

4 讨论

AA具有广泛的药理作用,具有抗感染、镇痛、利尿、抗生育活性、抗肿瘤及调节血压等功效[11-12],尽管AA可诱发AAN,引起了世人的警觉,但由于不合理的用药使得AAN事件时有发生,增强人们对AAN的认识和提高AAN的可治愈性仍是解决此类事件的关键。

近年来,miRNAs的功能研究越来越受到人们的重视,动物源miRNAs主要是通过与靶基因mRNA的3’端非编码区域(3’UTR)不完全或完全互配对结合,在翻译水平上特异性抑制基因的表达。miRNAs功能研究的关键在于其调控靶基因的确定,但由于miRNAs和靶基因的作用位点并不完全匹配,一个mRNA能被很多miRNAs调控,形成一个十分复杂的转录后调控网络,导致应用传统方法鉴定靶基因十分困难。miRNAs芯片技术能在特定的时间点筛选出不同样本间的差异miRNAs表达情况,是一种新型的高通量筛选技术,已在很多复杂性疾病的研究中进行探索并得到广泛的应用,如microRNA-206与乳腺癌的发病、转移密切相关[13-14],在AAN研究方面,已有研究显示,miRNAs与AA的基因毒性[7]、肾近曲小管上皮细胞的周期阻滞[8]等过程密切相关,但miRNAs在AA或AAI诱导的肾毒性疾病中其他发病过程的相关研究还未见报道。

本研究利用基因微阵列分析技术探索AAI对大鼠肾脏造成损伤后血清中miRNAs表达谱的影响,发现miR-10a-3p、miR-207、miR-3594-3p、miR-874-3p、miR-9a-3p等5个miRNAs表达明显上调,无明显下调的miRNAs;利用qRT-PCR技术对芯片结果进行检验,该结果与miRNAs芯片结果基本一致,增加了本研究的可靠性,发生明显改变的miRNAs在AAI致大鼠肾损伤过程中的具体功能还有待研究。本课题组对差异表达miRNAs的靶基因进行预测及信号通路分析,寻找到Rhebl1、Usp10等多个潜在靶基因,并发现AAI致肾损伤与过氧化物酶体途径、MAPK信号通路途径等有很大关系,信号通路分析结果为AAN机制的深入研究提供了新方向的借鉴和理论基础,针对该结果,本课题组将对此次miRNAs芯片结果的生物信息学进行深入研究和验证,并做出充分的阐述。

通过以上研究,本课题组已初步找到一些可能与AAI致肾损伤相关的miRNAs和潜在靶基因,及相应的生物途径,这将为进一步阐明AAN的发病机制提供新的线索,为其预防、诊断和治疗提供新的依据。

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