中草药  2015, Vol. 46 Issue (24): 3717-3721
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百里醌抑制卵巢癌生长及其机制研究
龚建明 , 王晓, 吴洁, 黄引平    
温州医科大学附属第一医院 妇产科, 浙江 温州 325000
摘要: 目的 研究百里醌对卵巢癌生长的影响及其作用机制。方法 百里醌作用卵巢癌细胞株SKOV3后,CCK-8法检测细胞增殖;ELISA法检测细胞凋亡;荧光探针法检测细胞内活性氧(ROS)水平;Western blotting检测胞核蛋白Nrf2、胞浆蛋白Keap1、Akt、p-Akt、NQO1、GCLC的表达;实时荧光定量PCR(RT-qPCR)检测细胞中NQO1和GCLC mRNA水平。制备裸鼠卵巢癌皮下移植瘤模型,观察百里醌对肿瘤生长的影响;免疫组化检测肿瘤组织Nrf2、NQO1和GCLC的阳性表达。结果 与对照组比较,百里醌明显抑制SKOV3细胞生长(P<0.05、0.01),并诱导细胞凋亡(P<0.01);升高细胞内ROS水平(P<0.05);下调胞核Nrf2蛋白及胞浆p-Akt蛋白表达(P<0.05),上调Keap1蛋白表达(P<0.001);下调NQO1、GCLC的mRNA和蛋白表达(P<0.05、0.01)。百里醌抑制裸鼠卵巢癌皮下移植瘤的生长(P<0.01),降低肿瘤组织中Nrf2、NQO1、GCLC的阳性表达(P<0.05、0.01)。结论 百里醌抑制卵巢癌生长,其机制可能是抑制胞核Nrf2蛋白表达,促进癌细胞内ROS的产生,诱导细胞凋亡。
关键词: 百里醌     卵巢癌     Nrf2     NQO1     GCLC     Keap1    
Inhibition of thymoquinone on tumor growth of ovarian cancer and its mechanism
GONG Jian-ming, WANG Xiao, WU Jie, HUANG Yin-ping    
Department of Obstetrics and Gynecology, the First Affiliated Hospital of Wenzhou Medical University, Wenzhou 325000, China
Abstract: Objective To study the effect and mechanism of thymoquinone in the growth inhibition of ovarian cancer. Methods After ovarian cancer cells SKOV3 were treated with thymoquinone, cell growth was observed by the CCK-8 assay and apoptosis was evaluated by ELISA. ROS in SKOV3 cells was detected by fluorescent probe. The expression of Keap1 protein, nuclear Nrf2 protein, P-Akt protein, Akt protein, NQO1 protein, and GCLC protein in SKOV3 cells was analyzed by Western blotting assay. NQO1 and GCLC mRNA were analyzed by RT-PCR. SKOV3 cells were injected into nude mice to establish engrafted tumor model. Immunohistochemistry was used to detect the positive expression of NQO1, GCLC, and Nrf2 in the ovarian tumors. Results Compared with the control group, thymoquinone significantly inhibited the proliferation of SKOV3 cells and increased the apoptosis (P < 0.05, 0.01). Thymoquinone could lessen the expression of nuclear Nrf2 protein and P-Akt protein (P < 0.05), but significantly increase the expression of Keap1 protein (P < 0.001). Protein and mRNA expression of NQO1 and GCLC in SKOV3 cells treaded by thymoquinone, were lower than those in the control group (P < 0.05, 0.01). The positive expression of NQO1, GCLC, and Nrf2 was also decreased in ovarian tumors after treatment of thymoquinone (P < 0.05, 0.01). Conclusion Thymoquinone could inhibit the proliferation of ovarian cancer cells by inhibiting the expression of nuclear Nrf2, increasing the generation of ROS in ovarian cancer cells to promote apoptosis.
Key words: thymoquinone     ovarian cancer     Nrf2     NQO1     GCLC     Keap1    

卵巢癌是女性生殖器官常见的恶性肿瘤之一,发病率仅次于宫颈癌,死亡率占各类妇科肿瘤的首位,严重威胁着女性的身体健康和生命安全。手术及化疗可治愈大多数卵巢癌初期患者,但临床上出现耐药的患者日益增多,晚期患者死亡率依然很高。故寻找有效的抗卵巢癌的药物成为热点课题之一[1]

随着植物化学技术的进步,传统医药的化学成分及功效逐渐被发现。黑种草Nigella damascene L. 主要分布于我国新疆及中东、中亚等地中海沿岸国家,全草均可入药,其种子含油高达30%。近年研究表明黑种草籽具有抗肿瘤、抗氧化、降血糖、调血脂、保肝等多种药理活性[2]。百里醌是黑种草籽油中分离得到的主要有效物质,具有清除羟自由基和活性氧自由基的能力,以及强大的抗肿瘤效应,可抑制多种恶性肿瘤细胞生长和转移[3, 4, 5]。但其抗肿瘤机制尚未完全明确。本实验观察百里醌体内外对卵巢癌生长的影响,并探讨其作用机制,为百里醌应用于临床治疗卵巢癌提供实验基础。

1 材料 1.1 药品与试剂

百里醌,批号H47007,质量分数99%,购自美国Sigma公司,以无水乙醇配制成2 mg/mL母液,临用时RPMI1640培养基稀释成所需浓度;凋亡ELISA、CCK-8、活性氧(ROS)试剂盒均购自南京建成生物工程研究所;胎牛血清、RPMI1640培养基购自美国Gibco公司;Nrf2、Keap1、Akt、p-Akt、NQO1、GCLC抗体购自美国Sigma公司;胞浆蛋白、磷酸化蛋白提取试剂盒购自武汉博士德生物工程有限公司。

1.2 动物

雌性BALB/c裸鼠,8~10周龄,体质量18~20 g,购于中国科学院上海实验动物中心。动物合格证号SCXK(沪)2007-0005。

1.3 细胞

人卵巢癌细胞株SKOV3购自中国科学院上海细胞库,培养在含10%胎牛血清的RPMI1640培养液中,37 ℃、5% CO2培养箱下培养。细胞单层贴壁生长,至70%~80%融合时胰蛋白酶消化传代。

2 方法 2.1 CCK-8法检测细胞增殖

收集处于对数生长期的SKOV3细胞,制成单细胞悬液,接种到96孔板,每孔5×103个,过夜贴壁后,分组如下:对照组,加入等量的1%乙醇溶液;百里醌15、30、60、120 μmol/L组,加入相应浓度的百里醌;每组3孔。设置空白孔,不加细胞加入等量的PBS。置37℃培养箱24 h,药物作用结束前1 h,各孔加入CCK-8溶液0.01mL,继续培养1 h,使用酶标仪检测450 nm波长处的吸光度(A)值,计算细胞存活率[存活率=(给药组A值-空白孔A值)/(对照组A值-空白孔A值)]。

2.2 ELISA法检测细胞凋亡

实验分为2组:对照组,加入等量的1%乙醇溶液;百里醌组,加入60 μmol/L百里醌。药物作用24 h,细胞凋亡检测按照试剂盒说明书进行。

2.3 细胞内ROS的测定

细胞分组及药物处理同“2.2”项,收集各组细胞,1 000 r/min离心5 min,得细胞沉淀,避光条件下加入适当体积稀释好的2,7-二氢二氯荧光素二乙酸酯(DCFH-DA),细胞培养箱内孵育20 min,培养液漂洗3次,荧光酶标仪测定荧光强度。

2.4 Westernblotting检测胞核蛋白Nrf2及胞浆蛋白Keap1、Akt、p-Akt、NQO1、GCLC的表达

细胞分组及药物处理同“2.2”项,收集各组细胞,加入含PMSF的细胞裂解液,提取上清液为细胞总蛋白。按试剂盒说明书提取胞浆蛋白及磷酸化蛋白。测量蛋白浓度后取等量蛋白样品上样,10% SDS-PAGE电泳,半干转膜仪转膜,5%脱脂奶粉封闭后加入一抗Nrf2、Keap1、Akt、p-Akt、NQO1、GCLC,4 ℃过夜,再度洗膜后加入辣根过氧化物酶标记的二抗,室温孵育2 h,ECL显色,X线胶片曝光,用软件Quantity One分析条带灰度值。

2.5 RT-PCR检测NQO1、GCLC基因表达

软件Primer3设计特异性引物,序列见表 1。Trizol法提取总RNA,取2 μL测定260、280 nm处A值,A260/A280值为1.8~2.0,说明RNA纯度较高。应用实时荧光定量PCR(RT-PCR)试剂盒进行逆转录和PCR。反应条件:95 ℃、1 min,60 ℃、1 min,65 ℃、2 min,循环40次。扩增产物在1.5%琼脂糖凝胶上电泳,以GAPDH作为内参,Bio-Rad Gel凝胶图像分析系统扫描,分析目的基因相对表达水平。

表 1 NQO1、GCLC引物序列 Table 1 Primer sequences of NQO1 and GCLC
2.6 裸鼠卵巢癌皮下移植瘤模型的制备

将2×106个SKOV3细胞悬浮于0.2 mL培养基中,注射到裸鼠腋下皮肤内建立卵巢癌皮下移植瘤模型。接种2周后,选择移植瘤直径约为10 mm的裸鼠,随机分为对照组和百里醌组,每组8只(保证每组至少5只成功完成实验)。对照组ig 1%无水乙醇0.2 mL;百里醌组,ig给药剂量为20 mg/kg(根据预试验结果确定),每2天给药1次,给药2周;第8周处死裸鼠,仔细剥离皮下移植瘤组织并称质量,计算抑瘤率。

2.7 免疫组化检测肿瘤组织中Nrf2、NQO1和GCLC蛋白表达

取新鲜移植瘤组织,经10%甲醛固定,石蜡包埋,切片,脱蜡水化后,按照免疫组化试剂盒操作步骤进行染色,在高倍镜下随机选择20个视野,计算镜下阳性细胞所占比例。

2.8 统计分析

实验结果均以(x± s )表示。应用SPSS16.0软件,两组间比较采用t检验,多组间比较采用方差分析。

3 结果 3.1 对SKOV3细胞增殖的影响

SKOV3细胞经浓度为15、30、60、120 μmol/L的百里醌作用24 h后,细胞存活率分别为(85.2±4.4)%、(75.1±3.5)%、(54.1±2.0)%和(34.1±2.7)%(n=3),与对照组比较,差异均显著(P<0.05、0.01)。百里醌作用24 h后IC50为61.4 μmol/L,因此选择60 μmol/L进行后续实验。

3.2 对SKOV3细胞凋亡的影响

60 μmol/L百里醌作用SKOV3细胞24 h后,诱导细胞凋亡率为(13.7±1.1)%(n=5),与对照组凋亡率(3.8±0.6)%比较,差异显著(P<0.01)。

3.3 对细胞内ROS生成的影响

SKOV3细胞经百里醌作用24 h后,细胞内DCF密度值为(68.3±2.7,n=5),与对照组(54.9±4.4)比较,差异显著(P<0.05)。

3.4 对胞核Nrf2蛋白及胞浆Keap1、p-Akt、Akt蛋白表达的影响

与对照组比较,百里醌组胞核Nrf2蛋白、胞浆p-Akt蛋白表达率显著下调(P<0.05);Akt蛋白表达无显著差异(P>0.05);Keap1蛋白表达显著上调(P<0.001)。结果见图 1

与对照组比较:*P<0.05**P<0.01, 下同
*P < 0.05 **P < 0.01 vs controlgroup, same as below
图 1 百里醌对SKOV3细胞胞核蛋白Nrf2及胞浆蛋白Keap1、p-Akt、Akt表达的影响(x± s , n = 5) Fig.1 Effect of thymoquinone on protein expression of nuclear Nrf2 as well as Keap1, p-Akt, and Akt in SKOV3 cells (x± s , n = 5)
3.5 对NQO1和GCLC mRNA和蛋白表达的影响

与对照组比较,百里醌组NQO1、GCLCmRNA和蛋白表达均下调,差异显著(P<0.05、0.01)。结果见图 23

图 2 百里醌对SKOV3细胞中NQO1和GCLC mRNA表达的影响 (x± s , n = 5)Fig.2 Effect of thymoquinone on expression of NQO1 and GCLC mRNA in SKOV3 cells (x± s , n = 5)

图 3 百里醌对SKOV3细胞中NQO1和GCLC蛋白表达的影响 (x± s , n = 5) Fig.3 Effect of thymoquinone on expression of NQO1 and GCLC proteins in SKOV3 cells (x± s , n = 5)
3.6 对裸鼠卵巢癌皮下移植瘤生长的抑制作用

百里醌组平均肿瘤质量为(0.43±0.06)g,与对照组[(0.79±0.10)g]比较,瘤质量明显减轻(P<0.01),抑瘤率为45.6%。

3.7 对肿瘤组织Nrf2、NQO1和GCLC表达的影响

免疫组化染色可见百里醌组肿瘤组织中Nrf2、NQO1和GCLC阳性表达率分别为(28.5±2.9)%、(27.0±3.4)%和(17.6±1.6)%,对照组中分别为(36.9±3.9)%、(44.4±5.0)%和(31.4±3.8)%;与对照组比较,百里醌组肿瘤组织中Nrf2、NQO1和GCLC阳性表达率均下降,差异显著(P<0.05、0.01)。结果见图 4

图 4 百里醌对肿瘤组织中Nrf2、NQO1和GCLC表达的影响 (x± s , n = 5) Fig.4 Effect of thymoquinone on expression of Nrf2, NQO1, and GCLC in tumor tissue (x± s , n = 5)
4 讨论

本实验结果表明,百里醌能抑制体外卵巢癌细胞的生长,同时细胞凋亡检测表明百里醌能有效诱导卵巢癌细胞凋亡。在体内移植瘤模型中,也观察到百里醌明显抑制卵巢癌移植瘤生长。进一步研究发现百里醌的抗肿瘤机制可能与其氧化应激相关。

氧化应激是体内的ROS超过了机体的抗氧化防御机制的一种病理状态,为了减少ROS对细胞的损害,细胞内有一系列有效的抗氧化防御体系。NQO1、GCLC等抗氧化酶均能降低过氧化物的形成,保护细胞膜结构和功能完整[6]

NQO1酶属于II相解毒酶,能够借助NADH或NADPH作为电子供体,催化醌类化合物的还原反应。体内的醌类被还原有2种方式:一种是单电子反应,生成活泼的半醌类物质,进而产生大量ROS,对细胞造成氧化损伤;另一种是双电子还原反应,由II相解毒酶催化,醌类直接被还原成氢醌,氢醌稳定易被排泄。NQO1酶能催化后一种反应,避免生成大量的ROS,从而保护细胞不被氧化损伤。

还原型谷胱甘肽(GSH)具有较强的抗氧化能力,能使细胞免受各种有害物质(如氧化剂、亲电子物质等)的损伤,通过谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)的催化作用清除体内多余的氧自由基。γ-谷氨酰半胱氨酸合成酶(γ-GCS)是合成GSH的限速酶,其催化亚基GCLC具有全酶活性。GCLC是通过合成GSH实现其抗氧化作用[7]

本实验结果显示百里醌作用于卵巢癌SKOV3细胞后,细胞内ROS水平明显升高,而细胞内NQO1、GCLCmRNA和蛋白水平均下降;免疫组化结果显示百里醌能明显抑制抗氧化酶NQO1、GCLC在体内肿瘤中的表达。百里醌使体内外卵巢癌抗氧化酶的表达减少,使体内清除氧自由基的能力下降,增加ROS的产生,促进卵巢癌细胞的凋亡。

Nrf2属于CNC转录因子家庭成员,是参与细胞内抗氧化应激反应的一种重要转录因子。Nrf2包括6个功能域,分别命名为Neh1~Neh6,正常情况下,Nrf2主要定位于细胞质内,活性由负性调节蛋白Keap1调控。Nrf2包括2个重要的保守区域,与Keap1相互作用后被固定于细胞质中的位点上,同时可被Keap1通过泛素化迅速降解[8, 9, 10]

当细胞受到激活剂的信号攻击后,激活PI3k/Akt途径,使位于细胞质的Akt转移到细胞膜上获得催化,Akt通过蛋白激酶对其Ser473和Thr308磷酸化而被激活[11, 12]。p-Akt可使下游靶基因产物Nrf2磷酸化,活化的Nrf2从Keap1中解离,易位进入细胞核,与小Maf蛋白等结合成异二聚体,识别抗氧化反应元件ARE,从而激活多种抗氧化基因和II相酶基因的转录,如NQO1、GCLC、SOD等[13]。这些酶直接和间接地参与ROS的清除,增加GSH和NADPH的合成,还可以加速致癌物的排除。

本实验结果表明,与对照组相比,百里醌组胞核Nrf2蛋白表达明显减少,而Keap1蛋白表达显著增加。这表明百里醌干预后SKOV3细胞内Nrf2在核内表达减少,可能是由于Keap1蛋白表达增加,加强了对Nrf2的结合抑制,并通过泛素化促进其降解。本实验同时发现,与对照组相比,百里醌组p-Akt蛋白表达亦减少,这表明百里醌可能同时通过抑制Akt的磷酸化,来减少Nrf2的活化。进而减少抗氧化酶NQO1、GCLC等在体内的表达,使肿瘤体内氧化与抗氧化失衡,产生大量的ROS,促进肿瘤细胞凋亡。

综上所述,百里醌可能通过促进Keap1蛋白表达、抑制Akt磷酸化、进而抑制Nrf2核转位,减少多种抗氧化酶和II相酶的表达,促进卵巢癌细胞内ROS水平增加,诱导凋亡。

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