卵巢癌是女性生殖器官常见的恶性肿瘤之一,发病率仅次于宫颈癌,死亡率占各类妇科肿瘤的首位,严重威胁着女性的身体健康和生命安全。手术及化疗可治愈大多数卵巢癌初期患者,但临床上出现耐药的患者日益增多,晚期患者死亡率依然很高。故寻找有效的抗卵巢癌的药物成为热点课题之一[1]。
随着植物化学技术的进步,传统医药的化学成分及功效逐渐被发现。黑种草Nigella damascene L. 主要分布于我国新疆及中东、中亚等地中海沿岸国家,全草均可入药,其种子含油高达30%。近年研究表明黑种草籽具有抗肿瘤、抗氧化、降血糖、调血脂、保肝等多种药理活性[2]。百里醌是黑种草籽油中分离得到的主要有效物质,具有清除羟自由基和活性氧自由基的能力,以及强大的抗肿瘤效应,可抑制多种恶性肿瘤细胞生长和转移[3, 4, 5]。但其抗肿瘤机制尚未完全明确。本实验观察百里醌体内外对卵巢癌生长的影响,并探讨其作用机制,为百里醌应用于临床治疗卵巢癌提供实验基础。
1 材料 1.1 药品与试剂百里醌,批号H47007,质量分数99%,购自美国Sigma公司,以无水乙醇配制成2 mg/mL母液,临用时RPMI1640培养基稀释成所需浓度;凋亡ELISA、CCK-8、活性氧(ROS)试剂盒均购自南京建成生物工程研究所;胎牛血清、RPMI1640培养基购自美国Gibco公司;Nrf2、Keap1、Akt、p-Akt、NQO1、GCLC抗体购自美国Sigma公司;胞浆蛋白、磷酸化蛋白提取试剂盒购自武汉博士德生物工程有限公司。
1.2 动物雌性BALB/c裸鼠,8~10周龄,体质量18~20 g,购于中国科学院上海实验动物中心。动物合格证号SCXK(沪)2007-0005。
1.3 细胞人卵巢癌细胞株SKOV3购自中国科学院上海细胞库,培养在含10%胎牛血清的RPMI1640培养液中,37 ℃、5% CO2培养箱下培养。细胞单层贴壁生长,至70%~80%融合时胰蛋白酶消化传代。
2 方法 2.1 CCK-8法检测细胞增殖收集处于对数生长期的SKOV3细胞,制成单细胞悬液,接种到96孔板,每孔5×103个,过夜贴壁后,分组如下:对照组,加入等量的1%乙醇溶液;百里醌15、30、60、120 μmol/L组,加入相应浓度的百里醌;每组3孔。设置空白孔,不加细胞加入等量的PBS。置37℃培养箱24 h,药物作用结束前1 h,各孔加入CCK-8溶液0.01mL,继续培养1 h,使用酶标仪检测450 nm波长处的吸光度(A)值,计算细胞存活率[存活率=(给药组A值-空白孔A值)/(对照组A值-空白孔A值)]。
2.2 ELISA法检测细胞凋亡实验分为2组:对照组,加入等量的1%乙醇溶液;百里醌组,加入60 μmol/L百里醌。药物作用24 h,细胞凋亡检测按照试剂盒说明书进行。
2.3 细胞内ROS的测定细胞分组及药物处理同“2.2”项,收集各组细胞,1 000 r/min离心5 min,得细胞沉淀,避光条件下加入适当体积稀释好的2,7-二氢二氯荧光素二乙酸酯(DCFH-DA),细胞培养箱内孵育20 min,培养液漂洗3次,荧光酶标仪测定荧光强度。
2.4 Westernblotting检测胞核蛋白Nrf2及胞浆蛋白Keap1、Akt、p-Akt、NQO1、GCLC的表达细胞分组及药物处理同“2.2”项,收集各组细胞,加入含PMSF的细胞裂解液,提取上清液为细胞总蛋白。按试剂盒说明书提取胞浆蛋白及磷酸化蛋白。测量蛋白浓度后取等量蛋白样品上样,10% SDS-PAGE电泳,半干转膜仪转膜,5%脱脂奶粉封闭后加入一抗Nrf2、Keap1、Akt、p-Akt、NQO1、GCLC,4 ℃过夜,再度洗膜后加入辣根过氧化物酶标记的二抗,室温孵育2 h,ECL显色,X线胶片曝光,用软件Quantity One分析条带灰度值。
2.5 RT-PCR检测NQO1、GCLC基因表达软件Primer3设计特异性引物,序列见表 1。Trizol法提取总RNA,取2 μL测定260、280 nm处A值,A260/A280值为1.8~2.0,说明RNA纯度较高。应用实时荧光定量PCR(RT-PCR)试剂盒进行逆转录和PCR。反应条件:95 ℃、1 min,60 ℃、1 min,65 ℃、2 min,循环40次。扩增产物在1.5%琼脂糖凝胶上电泳,以GAPDH作为内参,Bio-Rad Gel凝胶图像分析系统扫描,分析目的基因相对表达水平。
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表 1 NQO1、GCLC引物序列 Table 1 Primer sequences of NQO1 and GCLC |
将2×106个SKOV3细胞悬浮于0.2 mL培养基中,注射到裸鼠腋下皮肤内建立卵巢癌皮下移植瘤模型。接种2周后,选择移植瘤直径约为10 mm的裸鼠,随机分为对照组和百里醌组,每组8只(保证每组至少5只成功完成实验)。对照组ig 1%无水乙醇0.2 mL;百里醌组,ig给药剂量为20 mg/kg(根据预试验结果确定),每2天给药1次,给药2周;第8周处死裸鼠,仔细剥离皮下移植瘤组织并称质量,计算抑瘤率。
取新鲜移植瘤组织,经10%甲醛固定,石蜡包埋,切片,脱蜡水化后,按照免疫组化试剂盒操作步骤进行染色,在高倍镜下随机选择20个视野,计算镜下阳性细胞所占比例。
2.8 统计分析
实验结果均以(
SKOV3细胞经浓度为15、30、60、120 μmol/L的百里醌作用24 h后,细胞存活率分别为(85.2±4.4)%、(75.1±3.5)%、(54.1±2.0)%和(34.1±2.7)%(n=3),与对照组比较,差异均显著(P<0.05、0.01)。百里醌作用24 h后IC50为61.4 μmol/L,因此选择60 μmol/L进行后续实验。
3.2 对SKOV3细胞凋亡的影响60 μmol/L百里醌作用SKOV3细胞24 h后,诱导细胞凋亡率为(13.7±1.1)%(n=5),与对照组凋亡率(3.8±0.6)%比较,差异显著(P<0.01)。
3.3 对细胞内ROS生成的影响SKOV3细胞经百里醌作用24 h后,细胞内DCF密度值为(68.3±2.7,n=5),与对照组(54.9±4.4)比较,差异显著(P<0.05)。
3.4 对胞核Nrf2蛋白及胞浆Keap1、p-Akt、Akt蛋白表达的影响与对照组比较,百里醌组胞核Nrf2蛋白、胞浆p-Akt蛋白表达率显著下调(P<0.05);Akt蛋白表达无显著差异(P>0.05);Keap1蛋白表达显著上调(P<0.001)。结果见图 1。
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与对照组比较:*P<0.05**P<0.01, 下同 *P < 0.05 **P < 0.01 vs controlgroup, same as below 图 1 百里醌对SKOV3细胞胞核蛋白Nrf2及胞浆蛋白Keap1、p-Akt、Akt表达的影响( |
与对照组比较,百里醌组NQO1、GCLCmRNA和蛋白表达均下调,差异显著(P<0.05、0.01)。结果见图 2、3。
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图 2 百里醌对SKOV3细胞中NQO1和GCLC mRNA表达的影响 ( |
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图 3 百里醌对SKOV3细胞中NQO1和GCLC蛋白表达的影响 ( |
百里醌组平均肿瘤质量为(0.43±0.06)g,与对照组[(0.79±0.10)g]比较,瘤质量明显减轻(P<0.01),抑瘤率为45.6%。
3.7 对肿瘤组织Nrf2、NQO1和GCLC表达的影响免疫组化染色可见百里醌组肿瘤组织中Nrf2、NQO1和GCLC阳性表达率分别为(28.5±2.9)%、(27.0±3.4)%和(17.6±1.6)%,对照组中分别为(36.9±3.9)%、(44.4±5.0)%和(31.4±3.8)%;与对照组比较,百里醌组肿瘤组织中Nrf2、NQO1和GCLC阳性表达率均下降,差异显著(P<0.05、0.01)。结果见图 4。
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图 4 百里醌对肿瘤组织中Nrf2、NQO1和GCLC表达的影响 ( |
本实验结果表明,百里醌能抑制体外卵巢癌细胞的生长,同时细胞凋亡检测表明百里醌能有效诱导卵巢癌细胞凋亡。在体内移植瘤模型中,也观察到百里醌明显抑制卵巢癌移植瘤生长。进一步研究发现百里醌的抗肿瘤机制可能与其氧化应激相关。
氧化应激是体内的ROS超过了机体的抗氧化防御机制的一种病理状态,为了减少ROS对细胞的损害,细胞内有一系列有效的抗氧化防御体系。NQO1、GCLC等抗氧化酶均能降低过氧化物的形成,保护细胞膜结构和功能完整[6]。
NQO1酶属于II相解毒酶,能够借助NADH或NADPH作为电子供体,催化醌类化合物的还原反应。体内的醌类被还原有2种方式:一种是单电子反应,生成活泼的半醌类物质,进而产生大量ROS,对细胞造成氧化损伤;另一种是双电子还原反应,由II相解毒酶催化,醌类直接被还原成氢醌,氢醌稳定易被排泄。NQO1酶能催化后一种反应,避免生成大量的ROS,从而保护细胞不被氧化损伤。
还原型谷胱甘肽(GSH)具有较强的抗氧化能力,能使细胞免受各种有害物质(如氧化剂、亲电子物质等)的损伤,通过谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)的催化作用清除体内多余的氧自由基。γ-谷氨酰半胱氨酸合成酶(γ-GCS)是合成GSH的限速酶,其催化亚基GCLC具有全酶活性。GCLC是通过合成GSH实现其抗氧化作用[7]。
本实验结果显示百里醌作用于卵巢癌SKOV3细胞后,细胞内ROS水平明显升高,而细胞内NQO1、GCLCmRNA和蛋白水平均下降;免疫组化结果显示百里醌能明显抑制抗氧化酶NQO1、GCLC在体内肿瘤中的表达。百里醌使体内外卵巢癌抗氧化酶的表达减少,使体内清除氧自由基的能力下降,增加ROS的产生,促进卵巢癌细胞的凋亡。
Nrf2属于CNC转录因子家庭成员,是参与细胞内抗氧化应激反应的一种重要转录因子。Nrf2包括6个功能域,分别命名为Neh1~Neh6,正常情况下,Nrf2主要定位于细胞质内,活性由负性调节蛋白Keap1调控。Nrf2包括2个重要的保守区域,与Keap1相互作用后被固定于细胞质中的位点上,同时可被Keap1通过泛素化迅速降解[8, 9, 10]。
当细胞受到激活剂的信号攻击后,激活PI3k/Akt途径,使位于细胞质的Akt转移到细胞膜上获得催化,Akt通过蛋白激酶对其Ser473和Thr308磷酸化而被激活[11, 12]。p-Akt可使下游靶基因产物Nrf2磷酸化,活化的Nrf2从Keap1中解离,易位进入细胞核,与小Maf蛋白等结合成异二聚体,识别抗氧化反应元件ARE,从而激活多种抗氧化基因和II相酶基因的转录,如NQO1、GCLC、SOD等[13]。这些酶直接和间接地参与ROS的清除,增加GSH和NADPH的合成,还可以加速致癌物的排除。
本实验结果表明,与对照组相比,百里醌组胞核Nrf2蛋白表达明显减少,而Keap1蛋白表达显著增加。这表明百里醌干预后SKOV3细胞内Nrf2在核内表达减少,可能是由于Keap1蛋白表达增加,加强了对Nrf2的结合抑制,并通过泛素化促进其降解。本实验同时发现,与对照组相比,百里醌组p-Akt蛋白表达亦减少,这表明百里醌可能同时通过抑制Akt的磷酸化,来减少Nrf2的活化。进而减少抗氧化酶NQO1、GCLC等在体内的表达,使肿瘤体内氧化与抗氧化失衡,产生大量的ROS,促进肿瘤细胞凋亡。
综上所述,百里醌可能通过促进Keap1蛋白表达、抑制Akt磷酸化、进而抑制Nrf2核转位,减少多种抗氧化酶和II相酶的表达,促进卵巢癌细胞内ROS水平增加,诱导凋亡。
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