2. 西藏藏医学院, 西藏 拉萨 850000
2. Tibet Traditional Medical College, Lasa 850000, China
本研究通过对青藏高原不同种红景天研究现状及存在问题的分析[1],利用基因编码区和基因间的SSR标记对不同种的红景天材料进行群体遗传分析,结合藏医药理论及藏药多组分、多疗效特点,查阅中国食品药品监督管理总局网站(CFDA);发现目前已获批上市的含红景天原药材的药品7个及含有红景天药材的保健食品72个,因此有必要建立更接近于原药材的综合质量评价体系和方法。对青藏高原大花红景天Rhodiola crenulata (Hook. f. et Thoms.) H. Ohba而言,第1种是对已知的活性单体,如红景天苷[2,3,4]、酪醇[2,4]、没食子酸[2,4]、对香豆酸[2,4]进行测定,第2种是对已知的活性成分组[5],如总酚[6]、总多糖[7]、黄酮类[8]等进行测定。无论是对哪一种活性单体或活性成分组测定,均不能完全反映原药材的本质,故本实验选择HPLC法,以没食子酸、红景天苷、酪醇、儿茶素、没食子酸乙酯、对香豆酸6种活性单体为对照,同时对青藏高原不同产地的大花红景天上述成分进行定量分析,旨在建立简单可控的检测方法,尽可能达到全面有效地质量评价大花红景天的质量。1 仪器与材料
天美(岛津LC-20A)液相色谱仪,配SPD-20A紫外可见检测器;Diamonsil C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);GraceSmart RP18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);梅特勒AE200电子天平;KQ-250DB超声清洗器(250 W,昆山超声仪器有限公司)。甲醇(色谱纯,Fisher公司);30%乙醇;磷酸(分析纯);蒸馏水(自制)。没食子酸(批号110831-200803);红景天苷(批号110818-201206)购自中国食品药品检定研究院;酪醇(批号L-042-130713)、儿茶素(批号154-23-4)、没食子酸乙酯(批号831-61-8)、对香豆酸(批号501-98-4)购自北京盛世康普化工技术研究院,质量分数均大于98%。西藏自治区不同地区产样品均经嘎务教授鉴定为大花红景天Rhodiola crenulata (Hook. f. et Thoms.) H. Ohba的根茎。 2 方法与结果 2.1 色谱条件
Phenomenex Luna C18色谱柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),流动相为乙腈(A)-0.3%磷酸溶液(B),梯度洗脱(0~10 min,7% A;10~25 min,7%~14% A;25~40 min,14%~20% A);柱温25 ℃;体积流量1 mL/min,检测波长275 nm,进样量10 μL。取供试品溶液,在上述色谱条件下进样分析,样品中各待测组分与相邻峰的分离度均>1.5,拖尾因子在0.95~1.05,塔板数按没食子酸峰计算不低于4 000。对照品与样品的色谱图见图 1。
![]() | 图 1 混合物对照品 (A) 和样品 (B) HPLC图 Fig. 1 HPLC of mixtures reference substances (A) and sample (B) |
分别取没食子酸、红景天苷、酪醇、儿茶素、没食子酸乙酯、对香豆酸对照品适量,精密称定,加30%乙醇制成含没食子酸0.34 mg/mL、红景天苷0.18 mg/mL、酪醇0.24 mg/mL、儿茶素0.21 mg/mL、没食子酸乙酯0.23 mg/mL、对香豆酸0.16 mg/mL的混合对照品溶液。2.3 供试品溶液制备
取本品粉末约2.5 g,精密称定,置50 mL量瓶中,加30%乙醇20 mL,20 ℃超声处理(功率250 W,频率40 kHz)2 min,静置室温,加30%乙醇稀释至
刻度,摇均,精密量取5 mL,置25 mL量瓶中,加30%乙醇稀释至刻度,摇匀,滤过,取续滤液,即得。2.4 线性关系考察
取没食子酸、红景天苷、酪醇、儿茶素、没食子酸乙酯、对香豆酸对照品适量,精密称定,用30%乙醇制成含没食子酸19.11 μg/mL、红景天苷150.83 μg/mL、酪醇9.92 μg/mL、儿茶素8.54 μg/mL、没食子酸乙酯2.28 μg/mL、对香豆酸3.19 μg/mL的混合对照品标准溶液,分别精密吸取混合对照品溶液0.5、1.0、2.0、2.5、3.5、4.0、4.5、5.0 mL置10 mL量瓶中,加30%乙醇稀释至刻度,摇匀,分别精密进样10 μL,测定峰面积,以色谱峰面积(A)对进样量(C)进行线性回归,结果表明各组分在各自进样量范围内线性关系良好,线性范围、回归方程、回归系数见表 1。
![]() |
表 1 6种活性成分的线性关系 Table 1 Linear relationshipof six active ingredient |
取混合对照品溶液(没食子酸0.22 mg/mL、红景天苷0.24 mg/mL、酪醇0.22 mg/mL、儿茶素0.21 mg/mL、没食子酸乙酯0.22 mg/mL、对香豆酸0.24 mg/mL),按“2.1”色谱条件测定,重复进样6次,测得峰面积,计算没食子酸、红景天苷、酪醇、儿茶素、没食子酸乙酯、对香豆酸RSD分别为0.40%、0.41%、0.47%、0.43%、0.40%、0.39%,表明仪器精密度良好。 2.6 稳定性试验
取同一供试品溶液(山南桑日样品),按上述色谱条件测定,2 h测定1次,每次进样10 μL,共6次,测得没食子酸、红景天苷、酪醇、儿茶素、没食子酸乙酯、对香豆酸峰面积的RSD分别为1.48%、1.78%、1.64%、1.25%、1.43%、1.57%,表明本样品稳定性较好。2.7 重复性试验
取样品(山南措那)6份,按“2.1”项条件,每次进样10 μL,测得没食子酸、红景天苷、酪醇、儿茶素、没食子酸乙酯、对香豆酸质量分数的RSD分别为0.29%、0.41%、1.58%、0.93%、0.63%、1.61%,表明本方法重复性较好。2.8 加样回收率试验
精密称取适量的已测定的大花红景天药材粉末(林芝江达县)9份,分为低、中、高3个质量浓度,分别精密加入混合对照品,低质量浓度(没食子酸0.25 mg/mL、红景天苷0.94 mg/mL、酪醇0.11 mg/mL、儿茶素0.19 mg/mL、没食子酸乙酯0.09 mg/mL、对香豆酸0.07 mg/mL),中质量浓度(没食子酸0.32 mg/mL、红景天苷1.2 mg/mL、酪醇0.14 mg/mL、儿茶素0.23 mg/mL、没食子酸乙酯0.11 mg/mL、对香豆酸0.09 mg/mL)、高质量浓度(没食子酸0.40 mg/mL、红景天苷1.45 mg/mL、酪醇0.17 mg/mL、儿茶素0.28 mg/mL、没食子酸乙酯0.14 mg/mL、对香豆酸0.11 mg/mL),制样并测定,计算加样回收率,结果没食子酸、红景天苷、酪醇、儿茶素、没食子酸乙酯、对香豆酸的平均加样回收率分别为101.5%、100.8%、100.2%、101.8%、98.8%、100.5%,RSD值分别为2.2%、1.9%、1.9%、2.3%、2.4%、2.0%。 2.9 样品测定
分别精密吸取混合对照品溶液和供试品溶液各10 μL,按上述色谱条件进行测定,计算其中没食子酸、红景天苷、酪醇、儿茶素、没食子酸乙酯、对香豆酸在原药材中的质量分数。结果见表 2。
![]() |
表 2 样品测定结果 Table 2 Determination results of samples |
每个地区收购、采挖的红景天各活性成分质量分数有高有低,采收季节均在9~10月份,并且储藏时间短,当年采收的药材(山南、山南桑日、日喀则、日喀则昂仁县、那曲县、林芝产地样品)其活性成分的质量分数较高;受采收季节的影响,在9月前或10月后采收的红景天(山南措美卡雷拉山、林芝色季拉山)的活性成分质量分数较低;收购的样品(山南措那、日喀则南木林县、当雄、那曲、林芝江达县),其经过加工炮制,切段,未去皮,储藏时间长久,其活性成分质量分数也较低。另外其测得各组分之间质量分数变化的关系,有待更进一步研究。3 讨论
本实验采用HPLC法测定青藏高原大花红景天中没食子酸、红景天苷、酪醇、儿茶素、没食子酸乙酯、对香豆酸,线性关系良好,相关系数均在0.999 4以上,精密度、重复性、回收率均符合要求,样品稳定性好,此法能有效控制大花红景天的质量。3.1 流动相选择
比较不同比例的甲醇-水、甲醇-0.04%磷酸、乙腈-水、乙腈-0.04%磷酸等流动相,乙腈-0.04%磷酸溶液梯度洗脱分离效果好。3.2 波长选择
选择了没食子酸、红景天苷、酪醇、儿茶素、没食子酸乙酯、对香豆酸各自的吸收波长223、261、274、275、308、310 nm,综合评价后选择275 nm为测定波长,各指标峰峰形较好。3.3 溶剂选择
分别考察了100%、70%、50%、30%甲醇,100%、70%、50%、30%乙醇为溶剂的影响,发现用30%乙醇提取样品效果及色谱成分峰形均最佳。3.4 样品测定
从样品测定结果可以看出,青藏高原大花红景天中没食子酸的量平均值为4.57 mg/g、红景天苷的量平均值为10.57 mg/g(《中国药典》2010年版规定红景天苷质量分数大于5 mg/g,在16个样品中,有4个样品低于《中国药典》规定值)、酪醇量平均值为1.94 mg/g、儿茶素量平均值为1.15 mg/g、没食子酸乙酯量平均值为1.87 mg/g、对香豆酸量平均值为0.69 mg/g。
目前对大花红景天药材的质量控制主要以红景天苷为指标,这样不能完全体现红景天药材的质量,多个活性成分的测定更接近对原药材的质量控制,更符合祖国传统医学中“多成分”、“多靶点”的思维模式,因而更加客观、科学。
[1] | 尼玛次仁, 刘 青, 多杰仁青, 等. 青藏高原红景天研究进展及存在问题[J]. 中华中医药杂志, 2013, 28(9): 2675-2677. |
[2] | 林 夏, 胡军华, 崔培超, 等. HPLC同时测定大花红景天提取物中没食子酸、红景天苷、酪醇、对香豆酸的含量[J]. 中国实验方剂学杂志, 2013, 19(10): 102-105. |
[3] | 邵云东, 苏艳芳, 於洪建, 等. RP-HPLC法测定不同品种和产地红景天中指标成分的含量[J]. 中草药, 2004, 35(5): 505-508. |
[4] | 章 娟, 段虎成, 毕开顺. HPLC法同时测定大花红景天中的4个酚类成分的含量[J]. 北方药学, 2011, 8(7): 13-14. |
[5] | 张继稳, 陈立兵, 葛卫红. 中药物质组相关概念释义[J]. 世界科学技术-中医药现代化, 2008, 10(2): 1-4. |
[6] | 韩林辛, 倪 键. 大花红景天中红景天苷和总酚的含量测定[A] // 全国中药创新与研究论坛论文集[C]. 运城: 中华中医药学会中药制剂分会, 2009. |
[7] | 宋学伟, 任 磊, 韩泳平. 大花红景天多糖RCPS分离纯化及单糖组成分析[J]. 光谱学与光谱分析, 2008, 28(3): 642-644. |
[8] | 卢永昌, 王 玲. 大花红景天中总黄酮的提取及含量测定[J]. 青海师专学报: 教育科学, 2005, 6(1): 31-33. |