2. 南京恒通医药开发有限公司, 江苏 南京 210046
2. Nanjing Jiangsu Hengtong Pharmaceutical Development Co., LTD, Nanjing 210046, China
甘遂为大戟科大戟属植物甘遂Euphorbia kansui T. N. Liou ex T. P. Wang的块根,主产于山西、陕西、河南等地。甘遂性寒,味苦,有毒,归肺、肾、大肠经,具有泻水逐饮的功能,在临床上多用于肝硬化腹水、胸腔积液、水肿、咳喘、肿瘤等病症。主要化学成分为二萜、三萜及甾体类化合物,其他成分包括香豆素、脂肪酸、蔗糖、鞣质、树脂等[1],其中二萜类成分是其主要毒效成分[2, 3]。由斑马鱼毒性评价试验结合文献研究[4, 5]表明甘遂醋酸乙酯部位毒性最强,上述萜类化学成分主要集中在甘遂醋酸乙酯部位,本研究对甘遂的醋酸乙酯部分进行提取分离,共得到9个化合物,分别鉴定为甘遂萜脂B(kansuinin B,1)、3-O-(2,3-二甲基丁酰基)-13-O-十二烷酰基-巨大戟二萜醇 [3-O-(2,3- dimethylbutanoyl)-13-O-dodecanoyl-ingenol,2]、5-O-苯甲酰-20-去氧巨大戟二萜醇(5-benzoyl-20- deoxyingenol,3)、大戟醇(euphol,4)、异东莨菪素(isoscopletin,5)、腺苷(adenosine,6)、羟基酪醇(hydroxytyrosol,7)、2′,4′,7-三羟基异黄酮(2′,4′,7-trihydroxy isoflavone,8)、大黄素(emodin,9)。其中化合物1为假白榄烷型二萜类化合物,2、3为巨大戟烷型二萜类化合物,4为三萜类化合物,化合物6~8为首次从该植物中分离得到的化合物。通过MTT法研究化合物1~4、9对肠上皮细胞ICE-6细胞增殖的影响,结果表明化合物1、9对肠上皮细胞ICE-6增殖表现出了较好的抑制作用。
1 仪器与材料Bruker ARX500核磁共振仪(瑞士Bruker公司),制备型高效液相色谱仪(Waters 600),NU3000紫外检测器(江苏汉邦科技有限公司),柱色谱硅胶(100~200目)和薄层色谱硅胶G(60型)均为青岛海洋化工厂产品;所用溶剂均为分析纯或色谱纯。
IEC-6细胞购自ATCC公司。甘遂药材购自陕西宝鸡赤沙乡,经南京中医药大学吴启南教授鉴定为大戟科植物甘遂Euphorbia kansui T. N. Liou ex T. P. Wang的干燥块根。
2 提取与分离取生甘遂药材20 kg打粗粉,加入95%乙醇,50 ℃温浸。每天吸取上清液,减压浓缩,回收得甘遂乙醇提取物浓缩液,加适量硅藻土拌样、过筛,用醋酸乙酯反复萃取,得醋酸乙酯提取物浸膏1.032 kg。取醋酸乙酯浸膏进行硅胶柱色谱,以石油醚-醋酸乙酯(1︰0~0︰2)梯度洗脱,石油醚-醋酸乙酯(100︰1)洗脱流分得混合物,经高效液相制备色谱(甲醇-水80︰20),得化合物1(7 mg)、5(5 mg)、6(6 mg)、7(4 mg);石油醚-醋酸乙酯(100︰2)洗脱流分得黄色混合物,经高效液相制备色谱(乙腈-水95︰5)得化合物2(5 mg)、3(8 mg)、4(48 mg);石油醚-醋酸乙酯(100︰3)洗脱流分得棕色混合物,经高效液相制备(甲醇-水60︰40)得化合物8(5 mg)、9(36 mg)。
3 结构鉴定化合物1:白色粉末(氯仿)。1H-NMR (500 MHz,CDCl3) δ: 4.52 (1H,s,H-1),5.43 (1H,d,J = 3.5 Hz,H-3),3.70 (1H,dd,J = 9.6,3.6 Hz,H-4),5.88 (1H,d,J = 9.5 Hz,H-5),5.33 (1H,m,H-7),5.85 (1H,dd,J = 9.5,16.0 Hz,H-8),3.39 (1H,d,J = 3.0 Hz,H-11),2.95 (1H,s,H-12),3.95 (1H,m,H-13),1.30 (3H,s,H-16),6.04 (1H,s,H-17a),6.01 (1H,s,H-17b),1.35 (3H,s,H-18),0.82 (3H,s,H-19),1.39 (3H,d,J = 7.0 Hz,H-20),2.46 (1H,d,J = 16.0 Hz,2-OH),3.36 (1H,d,J = 10.0 Hz,8-OH),4.26 (1H,d,J = 16.0 Hz,15-OH),1.97 (3H,s,3-COMe),2.22 (3H,s,15-COMe); C5上取代苯环:7.64 (4H,m,H-2,6),7.11 (2H,m,H-3,5),7.32 (1H,m,H-4); C7上取代苯环:7.64 (4H,m,H-2,6),7.19 (1H,m,H-4),7.01 (2H,m,H-3,5);13C-NMR (125 MHz,CDCl3) δ: 87.1 (C-1),78.1 (C-2),76.7 (C-3),45.1 (C-4),73.8 (C-5),135.8 (C-6),64.6 (C-7),72.7 (C-8),209.5 (C-9),48.1 (C-10),60.8 (C-11),59.0(C-12),42.6 (C-13),204.9 (C-14),96.1 (C-15),20.2 (C-16),128.3 (C-17),21.6 (C-18),19.0 (C-19),17.0 (C-20),172.4 (1-CO),21.3 (1-COMe),168.8 (3-CO),20.4 (3-COMe),164.9 (5- CO),166 (7-CO)。以上数据与文献报道一致[6],故鉴定化合物1为甘遂萜脂B。
化合物2:白色蜡状物(氯仿)。1H-NMR (500 MHz,CDCl3) δ: 6.03 (1H,m,H-7),6.01 (1H,m,H-1),5.44 (1H,s,H-3),4.15 (2H,s,H-20),4.09 (1H,dd,J = 12.0,2.5 Hz,H-8),4.06 (1H,s,H-5),2.72 (1H,dd,J = 16.8,2.8 Hz,H-12a),2.61 (1H,m,H-11),2.20 (1H,m,H-12b),1.78 (3H,s,H-19),1.19 (3H,s,H-17),1.06 (3H,s,H-16),0.97 (3H,d,J = 7.0 Hz,H-18),3位取代基:2.31 (1H,m,H-2′),1.91 (1H,m,H-3′),0.95 (3H,d,J = 7.0 Hz,H-4′ ),0.92 (3H,d,J = 6.5 Hz,3′-CH3),1.14 (3H,d,J = 7.0 Hz,2′-CH3),13位取代基:2.20 (2H,m,H-2′′),1.55 (2H,m,H-3′′),1.25 (16H,s,H-4′′~9′′),0.88 (3H,t,J = 6.8 Hz,H-10′′)。以上数据与文献报道一致[6],故鉴定化合物2为3-O-(2,3-二甲基丁酰基)-13-O-十二烷酰基巨大戟二萜醇。
化合物3:无色蜡状固体(氯仿)。1H-NMR (500 MHz,CDCl3) δ: 5.99 (1H,d,J = 1.5 Hz,H-1),5.89 (1H,m,H-7),5.40 (1H,s,H-5),4.25 (1H,dd,J = 4.5,14.1 Hz,H-8),3.6 (1H,s,H-3),2.43 (1H,m,H-11),2.34 (1H,ddd,J = 4.8,6.3,15.9 Hz,H-12a),1.82 (3H,d,J = 1.5 Hz,H-19),1.76 (1H,ddd,J = 4.8,6.3,15.9 Hz,H-12b),1.60 (3H,s,H-20),1.17 (3H,s,H-17),1.07 (3H,s,H-16),0.98 (3H,d,J = 6.9 Hz,H-18),0.95 (1H,m,H-14),0.69 (1H,m,H-13),COPh-5依次为8.10 (2H,m),7.59 (2H,m),7.45 (1H,m)。以上数据与文献报道一致[6],故鉴定化合物3为5-O-苯甲酰-20-去氧巨大戟二萜醇。
化合物4:白色针晶(氯仿)。1H-NMR (300 MHz,CDCl3) δ: 5.09 (1H,m,H-24),3.23 (1H,dd,J = 11.4,4.5 Hz,H-3),1.68 (3H,s,H-26),1.60 (3H,brs,H-27),1.00 (3H,s,H-29),0.95 (3H,s,H-19),0.87 (3H,s,H-28),0.84 (3H,d,J = 6.6 Hz,H-21),0.80 (3H,s,H-18),0.75 (3H,s,H-30);13C-NMR (150 MHz,CDCl3) δ: 35.3 (C-1),28.0 (C-2),79.1 (C-3),39.0 (C-4),51.0 (C-5),19.0 (C-6),27.8 (C-7),134.1 (C-8),133.6 (C-9),37.4 (C-10),21.7 (C-11),28.2 (C-12),44.2 (C-13),50.1 (C-14),29.9 (C-15),28.3 (C-16),49.7 (C-17),15.7 (C-18),20.3 (C-19),36.0 (C-20),19.0 (C-21),35.5 (C-22),24.8 (C-23),125.3 (C-24),131.0 (C-25),17.8 (C-26),25.9 (C-27),24.6 (C-28),28.2 (C-29),15.7 (C-30)。以上数据与文献报道一致[7],故鉴定化合物4为大戟醇。
化合物5:无色针晶(氯仿)。1H-NMR (500 MHz,CDCl3) δ: 7.59 (1H,d,J = 9.0 Hz,H-4),6.27 (1H,d,J = 9.0 Hz,H-3),6.92 (1H,s,H-5),6.85 (1H,s,H-8),6.1 (1H,brs,OH),3.95 (3H,s,-OCH3)。以上数据与文献报道一致[8],故鉴定化合物5为异东莨菪素。
化合物6:无色粉末(氯仿)。1H-NMR (500 MHz,CDCl3) δ: 8.41 (1H,s,H-8),8.25 (1H,s,H-2),6.01 (1H,d,J = 6.0 Hz,H-1′),4.70 (1H,t,J = 5.5 Hz,H-2′),4.33 (1H,dd,J = 5.0,3.0 Hz,H-3′),4.16 (1H,dd,J = 5.0,3.0 Hz,H-4′),3.88 (1H,dd,J = 12.0,2.5 Hz,H-5′),3.75 (1H,dd,J = 12.0,3.0 Hz,H-5′);13C-NMR (125 MHz,CDCl3) δ: 156.4 (C-6),151.6 (C-8),150.2 (C-5),142.7 (C-2),121.1 (C-4),91.3 (C-1′),88.2 (C-4′),75.9 (C-2′),72.6 (C-3′),63.4 (C-5′)。以上数据与文献报道一致[9],故鉴定化合物6为腺苷。
化合物7:无色粉末(氯仿)。1H-NMR (500 MHz,CDCl3) δ: 8.65 (1H,s,-OH),8.55 (1H,s,-OH),6.60 (1H,d,J = 7.5 Hz,H-5),6.57 (1H,d,J = 2.0 Hz,H-2),6.42 (1H,dd,J = 2.0,7.5 Hz,H-6),4.51 (1H,d,J = 5.0 Hz,-OH),3.50 (2H,m,H-8),2.53 (2H,t,J = 7.5 Hz,H-7);13C-NMR (125 MHz,CDCl3)δ: 144.8 (C-3),143.2 (C-4),130.1 (C-1),119.3 (C-6),116.2 (C-5),115.3 (C-2),62.5 (C-8),38.4 (C-7)。以上数据与文献报道一致[10],故鉴定化合物7为羟基酪醇。
化合物8:淡黄色粉末(DMSO)。1H-NMR (500 MHz,DMSO-d6) δ: 8.13 (1H,s,H-2),7.92 (1H,d,J = 9.0 Hz,H-5),6.97 (1H,d,J = 8.0 Hz,H-6′),6.91 (1H,dd,J = 9.0,2.5 Hz,H-6),6.83 (1H,d,J = 2.5 Hz,H-8),6.34 (1H,d,J = 2.0 Hz,H-3′),6.26 (1H,dd,J = 8.0,2.0 Hz,H-5′)。以上数据与文献报道一致[11],故鉴定化合物8为2′,4′,7-三羟基异黄酮。
化合物9:黄色粉末(氯仿)。1H-NMR (500 MHz,CDCl3) δ: 12.3 (1H,s,-OH),12.1 (1H,s,-OH),7.63 (1H,brs,H-5),7.28 (1H,d,J = 2.5 Hz,H-4),7.10 (1H,brs,H-7),6.67 (1H,d,J = 2.5 Hz,H-2),5.75 (1H,brs,3-OH),2.45 (3H,s ,CH3)。以上数据与文献报道一致[12],故鉴定化合物9为大黄素。
4 活性筛选采用MTT法测定细胞相对抑制率,取对数生长期IEC-6细胞,用0.25%胰酶消化,调整细胞密度为1×104个/mL,以每孔100 μL的体积将细胞接种于96孔板中,设给药组、阴性对照组、空白组,各组均设6个复孔,置37 ℃、5% CO2的饱和湿度培养箱中培养24 h使细胞贴壁,然后加入每孔100 L不同浓度的1~4、9的供试品溶液,使得各供试品的终浓度为3.125、6.25、12.5、25、50 μg/mL。阴性对照组加入等体积细胞培养液,置于37 ℃、5% CO2的饱和湿度培养箱中培养24、48、72 h后,每孔加入20 μL MTT溶液(浓度为5 mg/mL),继续培养4 h,轻轻吸弃上清,每孔加二甲基亚砜(DMSO)150 μL,水平摇床混匀,使结晶物充分溶解。置酶标仪于490 nm波长处测定吸光度(A)值。按下式计算给药前后IEC-6的生长抑制率(IR),求算IC50值。测定结果见表 1。
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表 1 化合物1~4、9对大鼠小肠隐窝上皮细胞株IEC-6 增殖的影响 Table 1 Effect of compounds 1—4 and 9 from root tubers of E. kansui on proliferation ofIEC-6 cells |
由实验结果看出,巨大戟烷型二萜类成分化合物3的IC50值较小,具有较强的肠细胞毒性,且随浓度的增加,细胞增殖抑制率增大,具有一定的量-毒关系。假白榄烷型二萜类化合物1和三萜类化合物4未显示出较好的细胞毒性作用。据文献资料显示,大黄素具有致泻的作用[13],并且具有抑制细胞增殖的作用[14],实验结果得出大黄素(9)对肠上皮细胞ICE-6具有较好的抑制作用。
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