2. 南京中医药大学 中药资源产业化与方剂创新药物国家地方联合工程研究中心, 江苏 南京 210023
2. National and Local Collaborative Engineering Center of Chinese Medicinal Resources Industrialization and Formulae Innovative Medicine, Nanjing University of Chinese Medicine, Nanjing 210023, China
少腹逐瘀方(Shaofu Zhuyu Decoction,SZD)源于清代王清任的《医林改错》,由当归、赤芍、川芎、五灵脂、蒲黄、小茴香、干姜、肉桂、延胡索、没药10味中药组成。方中以当归、赤芍、川芎为君药,具有活血化瘀、养血调经之功效;五灵脂、蒲黄、延胡索、没药为辅药,以通利血脉、祛瘀止痛;小茴香、干姜、肉桂为佐药,温经散寒、理气止痛,并引诸药直达少腹,全方组合具有温经散寒、活血化瘀、消肿止痛之功效[1]。现代研究表明,SZD具有解痉、镇痛、抗炎、改善血液循环的药理作用[1, 2, 3, 4]。SZD传统给药方式为口服给药,而少腹逐瘀方贴剂(Shaofu Zhuyu Transdermal Patches,SZTP)经皮给药相对于口服给药具有独特的优势和特色,例如给药方便,药效作用时间长,给药次数较少,患者适应性较好,用药方便等,还可避免肝脏首关效应,从而提高有效物质在体内的利用度。透皮药物传递系统(transdermal delivery systems,TDS)是指通过皮肤表面给药,以达到局部或全身治疗作用的一类制剂,具有安全性高、血药浓度稳定等优点,近年来已引起广泛关注并有了长足发展[5]。为了保证TDS的有效性、安全性并达到控释目的,对药物的经皮渗透性进行研究十分必要,从而为处方的设计和优化提供科学依据[6, 7]。体外经皮渗透实验可直接测定药物的透皮速率,并可模拟体内微环境,预测药物分子经过皮肤进入体内的动力学过程,在处方工艺研究和促渗剂优化等方面具有重要意义[8]。本实验在前期研究的基础上[1, 3, 4],评价了在不同浓度和不同种类促渗剂作用下SZTP中9种主要效应成分的体外经皮渗透特性并优选出适宜的促渗剂,为SZTP的研发、临床应用和传统剂型改革提供一定科学依据与参考。
1 仪器与材料ACQUITYTM UPLC超高效液相色谱系统,美国Waters公司,XevoTM TQ质谱系统,美国Waters公司;TK—12D透皮扩散试验仪,上海锴凯科技贸易有限公司;Startorius BT1250电子天平,赛多利斯科学仪器北京有限公司;EPED超纯水机,南京易普易达科技发展有限公司;TDL240B离心机,上海安亭科学仪器厂。
对照品香蒲新苷(TH,批号111573-200503)、咖啡酸(CA,批号110885-200102)、没食子酸(GA,批号110831-200302)、异鼠李素-3-O-新橙皮苷(IN,批号111571-200402)、芍药内酯苷(AF,批号110736-200833)、阿魏酸(FA,批号110773-200611),质量分数均≥98%,购自中国食品药品检定研究院;对照品普鲁托品(PP)、延胡索乙素(TP)、四氢非洲防己碱(TB),质量分数均≥98%,实验室自制;氮酮,福建寿宁美菲思生物化学品厂;1,2-丙二醇,上海凌峰化学试剂有限公司;乙腈,色谱纯,Tedia公司;甲酸,色谱纯,Merck公司;超纯水,自制;其余试剂均为分析纯。
SPF级SD大鼠,雄性,体质量(220±10)g,由浙江省实验动物中心提供,合格证号SCXK(浙)2008-0033。
2 方法与结果 2.1 SZTP有效部位的制备称取SZTP组方药材粗粉930.0 g,按照当归-川芎-赤芍-肉桂-小茴香-五灵脂-没药-蒲黄-延胡索-干姜(3∶1∶2∶1∶0.5∶2∶1∶3∶1∶1)比例配比,水煎煮提取2次,第1次加10倍量水煎煮2 h,第2次加8倍量水煎煮1.5 h,合并2次煎出液,浓缩至一定体积,将水煎液用95%乙醇调至含醇量为80%,放置24 h,滤过沉淀,取上清液浓缩至生药量为1.25 g/mL,即得SZD混悬液,其中FA、TH、IN、AF、CA、GA、PP、TP、TB分别为0.56、0.16、0.19、0.69、3.70、2.60、0.17、0.13、0.19 mg/mL。
2.2 实验分组实验前取“2.1”项下制备的SZD混悬液240 mL,分为6组后加入不同促渗剂:无促渗剂组(对照组);5%氮酮组(组1);5%丙二醇组(组2);2.5%氮酮+2.5%丙二醇组(组3);1%氮酮+4%丙二醇组(组4);4%氮酮+1%丙二醇组(组5)。
2.3 离体大鼠皮肤的制备取雄性SD大鼠,麻醉后用电动剃须刀将腹部毛剔除干净,24 h后脱颈处死,剥离腹部皮肤,清除皮下血管及组织,用纯水冲洗至无白色浑浊,铝箔包裹后于-20 ℃保存,备用。实验前将皮肤浸于37 ℃生理盐水中解冻,将无菌纱布覆盖在角质层上,在纱布上滴加含不同促渗剂的SZD混悬液0.5 mL,确保扩散至整个皮肤表面并充分接触8 h,除去纱布后用纯水洗净并立即使用[7, 8]。
2.4 体外透皮实验采用垂直式Franz扩散池进行透皮实验,将离体腹部皮肤角质层朝上固定于扩散池上,接收池中加入7.5 mL接收液,供给池中加入3 mL供给液,水浴槽温度控制在(37±0.2)℃,磁搅拌子转速200 r/min,分别于加样后1、2、4、6、8、10、12 h从接收池取250 μL接收液作为待测液,同时补充等量等温的接收液。待测液13 000 r/min离心10 min后,取上清用于分析。
2.5 供给液和接收液的制备每份供给液3mL,分别为上述6组SZD混悬液,接收液为20%乙醇溶液,使用前均预热至37 ℃,并且超声除气。
2.6 对照品溶液的制备精密称量9种成分的对照品适量于10 mL量瓶中,加甲醇稀释至刻度,配制成混合对照品溶液,其中FA、TH、IN、AF、CA、GA、TP、PP、TB的质量浓度分别为212、117、105、123、150、149、236、187、228 μg/mL。取上述混合对照品溶液并用空白皮肤接收液稀释成7个不同质量浓度的对照品工作液。
2.7 分析条件 2.7.1 液相条件ACQUITYTM UPLC BEH C18柱(100 mm×2.1 mm,1.7 μm,Waters公司);流动相为0.1%甲酸水溶液-乙腈,梯度洗脱:0~1 min,5%~10%乙腈;1~6 min,10%~30%乙腈;6~7 min,30%~40%乙腈;7~8 min,40%~95%乙腈;8~10 min,95%~5%乙腈;体积流量0.4 mL/min;进样体积2 μL;柱温35 ℃。
2.7.2 质谱条件离子源:ESI源;毛细管电压3 kV;扫描方式:多反应监测(MRM)方式,正负离子模式,选择监测的离子反应分别为FA (-) m/z 193→134,TH (+) m/z 771→317,IN (-) m/z 623→ 314,AF (+) m/z 481→197,CA (+) m/z 181→89,GA (-) m/z 169→125,TP (+) m/z 356→192,PP (+) m/z 354→188,TB (+) m/z 342→178。各成分典型MRM色谱图见图 1。
![]() | 图 1 空白皮肤接收液 (A)、加对照品空白皮肤接收液 (B) 和样品接收液 (C) 中各成分典型MRM色谱图Fig. 1 Representative MRM chromatograms of nine components in blank receptor solution (A),blank receptor solution spiked with reference substances (B),and sample solution (C) |
取空白皮肤接收液、对照品溶液与样品溶液进行UPLC-MS/MS检测,考察方法的专属性;混合对照品工作液重复进样6次,以峰面积为指标计算RSD(n=6),以考察方法的精密度;样品溶液间隔0、1、2、4、8、12、24 h进样,以峰面积为指标计算RSD值(n=6),考察样品的日内稳定性;在已知各成分质量浓度的样品溶液中加入混合对照品工作液,考察方法的平均回收率(n=6)。结果表明,空白皮肤接收液中的内源性浸出物不干扰各成分的测定,方法专属性良好;各成分精密度的RSD≤6.26%,日内稳定性的RSD≤5.91%,平均回收率为94.6%~106.3%,RSD≤6.19%,均符合分析要求。 2.9 标准曲线与定量限
取对照品工作液,13 000 r/min离心10 min后取上清进行UPLC-MS/MS检测,以各成分的质量浓度(X,μg/mL)为横坐标,峰面积(Y)为纵坐标进行线性回归,得回归方程和线性范围,同时按信噪比(S/N)=10计算各成分的定量限。结果FA:Y=1.962 0 X-86.081,r=0.999 8,线性范围0.052~53.0 μg/mL,定量限12.9 ng/mL;TH:Y=0.778 1 X-30.844,r=0.999 3,线性范围0.114~29.3 μg/mL,定量限28.6 ng/mL;IN:Y=0.395 2 X-35.185,r=0.998 0,线性范围0.103~6.56 μg/mL,定量限12.8 ng/mL;AF:Y=1.638 5 X+58.013,r=0.999 8,线性范围0.030~7.69 μg/mL,定量限7.5 ng/mL;CA:Y=4.331 9 X+54.662,r=0.999 7,线性范围0.036~2.34 μg/mL,定量限11.9 ng/mL;GA:Y=0.390 8 X+107.67,r=0.997 8,线性范围0.036~9.31 μg/mL,定量限8.64 ng/mL;TP:Y=533.76 X+1 376.2,r=0.997 3,线性范围0.014~3.68 μg/mL,定量限0.12 ng/mL;PP:Y=59.944 X+232.87,r=0.999 8,线性范围0.012~2.92 μg/mL,定量限1.32 ng/mL;TB:Y=31.084 X+315.14,r=0.998 3,线性范围0.014~3.56 μg/mL,定量限0.19 ng/mL。
2.10 样品中各成分测定结果将峰面积代入上述标准曲线求得不同时间各成分的质量浓度,结果见表 1。由表 1数据可以看出,多组分系统原始数据量庞大,且由于各组分的量差异较大,促渗剂对不同成分促渗作用强弱不一,难以直接从某个成分的参数或各成分参数之和判断整体渗透效果的优劣。因此,运用统计学方法简化数据,进行主成分分析(PCA),以客观评价整体促渗效果。
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表 1 各组不同时间点各成分的质量浓度 Table 1 Concentrations of each component at different timepoints in each group . |
通过3个步骤完成中药多组分经皮渗透研究的评价:(1)通过体外透皮实验采用UPLC-MS/MS法测得各组中9种成分在不同时间点的质量浓度;(2)采用PCA对数据进行降维处理,获取能反映原始变量的主成分及其贡献率,并计算不同时间的总因子得分(F);(3)以F代替质量浓度,按下式计算单位面积累积渗透量(Q):
将Q对时间(t)作图,并进行线性拟合,计算稳态透皮速率(Js),并以Js的大小来判断促渗剂的优劣。
2.11.1 主成分提取及贡献率计算[9]为了寻求不同组各成分经皮渗透的规律,对各组中9种成分不同时间点的质量浓度进行PCA,结果见表 2。由表 2可知,第1个因子的贡献率为80.26%,第2个因子的贡献率为14.59%,前2个因子的累积贡献率达到了94.84%,说明前2个因子对指标的影响均起着主导作用,且保留了原始变量的绝大部分信息,能够比较客观地反映和代表指标的总体特征和趋势,因此选取这2个因子作为分析所用的主成分。
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表 2 主成分特征值与贡献率 Table 2 Eigenvalues and contribution rateof main components. |
2.11.2 F计算
F能较全面地反映原始变量的相关关系,以主成分因子得分与其方差贡献率乘积之和相加,得出各组样品的F,是构造综合评价函数的常用方法,可对样品进行综合评判,其计算公式为F=0.662 2 F1+0.286 2 F2,按公式计算出的各组样品不同时间的F,具体结果见表 3。
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表 3 各组总因子得分 Table 3 Scores of total factors in each group . |
将表 3中各组不同时间点的F代入上述方程求得Q,并将Q与t进行拟合,求得回归方程,所得方程的斜率即为Js,具体结果见表 4。从表 4可知,与对照组相比,其余各组Js均明显增大,说明促渗剂促渗效果明显,其中以组1和组3促渗效果最明显(分别为对照组的2.6倍和2.7倍),而组3为联合使用促渗剂可发挥协同促渗作用,从而减少促渗剂的用量,降低毒性反应,又可使主药发挥最佳效能,且氮酮、
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表 4 紫金龙属中分离鉴定的生物碱类成分 Table 4 Alkaloids isolated from plants of Dactylicapnos Wall. |
丙二醇是常见的促渗剂组合,氮酮具有相当的亲脂性,与极性溶剂丙二醇合用,丙二醇能够增加氮酮在皮肤角质层的溶解度,从而提高氮酮对皮肤角质层的作用时间和作用强度,并可有效地缩短时滞[10],因此,优选2.5%氮酮+2.5%丙二醇作为适宜的促渗剂。
3 讨论 3.1 促渗剂的选择提高药物的透皮速率是开发经皮给药系统的关键,一般多采用促渗剂的方式达到促进透皮吸收效果。因此,适宜的促渗剂种类、浓度等对药物促渗透作用是非常重要的。氮酮是目前常用的化学促渗剂之一[11],其可破坏角质层脂质,增加角质层间细胞的流动性,降低药物的扩散阻力,且氮酮可作用于细胞内脂质,使扩散阻力减少。丙二醇属于脂肪醇类促渗剂,可增加药物的溶解度,与氮酮合用可延长氮酮在角质层中的滞留时间,从而延长促渗时间。
前期研究发现氮酮与丙二醇在低浓度(≤5%)促渗效果较好,随着浓度升高促渗效果逐渐减弱,甚至对某些成分产生一定的抑制作用。因此,本实验选择的促渗剂浓度为5%。研究结果表明,5%氮酮促渗效果优于5%丙二醇,与文献报道相符[12];而不同配比的氮酮与丙二醇合用则表现出一定的协同作用,其中以2.5%氮酮+2.5%丙二醇促渗效果最为显著。
3.2 数据分析方法的选择从表 2数据分析结果可知,多组分系统原始数据量庞大,且由于各成分的量差异较大,促渗剂对不同成分促渗作用强弱不一,难以直接从某个成分的参数或各成分参数之和判断整体渗透效果的优劣。而运用统计学方法可简化数据,PCA是从多个变量之间的相互关系入手,利用降维的思想将多个变量化为少数几个互不相关的综合变量的统计学方法,并使这些综合变量尽可能保留原有信息。因此,近年来已有不少学者尝试将PCA方法应用于中药质量控制[13, 14]、原料药物理特性[15]以及配伍机制[16]、中药复方贴剂制备工艺优化[17]等方面。
本实验运用PCA方法对SZTP效应部位中多组分经皮渗透效果进行了整体分析与评价。经PCA后,原有9个成分可转换为2个主成分即可保留94.84%的原始信息。药物经皮渗透性在很大程度上受到药物理化性质诸如相对分子质量、熔点、脂/水分配系数及热力学活度等的影响[10],而PCA方法可探索并归纳出其中的潜在特征,通过求得F将原有多组数据转化为1组数据,既对原始数据进行了综合归一,亦简化了后续计算。进而采用各主成分的贡献率作为权重进行F的计算亦避免了在进行综合评价时采用主观定权的诸多弊端。
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