中草药  2014, Vol. 45 Issue (14): 2042-2046
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野百合碱诱导胰腺癌细胞BxPC-3呈巨型多倍体化研究
曾军英1,2, 李胜华1,2, 伍贤进1,2 , 丁丹勇1,2, 刘婷1,2    
1. 民族药用植物资源研究与利用湖南省重点实验室, 湖南 怀化 418008;
2. 怀化学院 生命科学系, 湖南 怀化 418008
摘要目的 观察野百合碱体外诱导人胰腺癌细胞株BxPC-3形成多倍体巨细胞的作用。方法 BxPC-3细胞以1×104/mL的浓度接种于含野百合碱(0、5、10、20 μg/mL)的RPMI 1640培养液内72 h,Giemsa染色分析细胞形态,流式细胞术分析DNA量,Annexin V-FITC/PI双标法流式细胞术观察野百合碱对BxPC-3细胞凋亡的诱导作用,染色体展示分析野百合碱处理后BxPC-3多倍体巨细胞的染色体组,Western blotting检测周期蛋白Cyclin B1的表达。结果 Giemsa染色显示,多倍体细胞体积大,多核。流式细胞仪检测细胞DNA量表明,野百合碱处理72 h出现4N、8N巨型BxPC-3多倍体细胞,诱导细胞凋亡,下调Cyclin B1蛋白表达,并与野百合碱的质量浓度呈依赖关系。染色体展示分析再次证明了巨型多倍体细胞的形成。结论 野百合碱通过抑制周期蛋白Cyclin B1的表达,导致多倍体巨细胞增加,出现4N、8N巨型BxPC-3多倍体细胞,促使BxPC-3细胞凋亡或死亡。
关键词野百合碱     胰腺癌细胞     多倍体巨细胞     周期蛋白Cyclin B1     细胞凋亡    
Effect of monocrotaline on induction of pancreatic cancer cell BxPC-3 into polyploid giant cells
ZENG Jun-ying1,2, LI Sheng-hua1,2, WU Xian-jin1,2, DING Dan-yong1,2, LIU Ting1,2    
1. Key Laboratory of Hunan Province for Study and Utilization of Ethnic Medicinal Plant Resources, Huaihua 418008, China;
2. Department of Life Sciences, Huaihua University, Huaihua 418008, China
Abstract: Objective To observe the effect of monocrotaline (MCT) extract from Crotalaria sessiliflora on inducing human pancreatic cancer cell BxPC-3 into polyploid giant cells in vitro. Methods BxPC-3 cells (1×104/mL) were inoculated with MCT (0, 5, 10, and 20 μg/mL) in RPMI-1640 for 72 h, respectively, then the cell morphology was observed by Giemsa staining, and the DNA content was measured by flow cytometry; BxPC-3 cells-induced apoptosis was checked by AnnexinV-FITC/PI double staining using flowcytometry, BxPC-3 polyploid giant cell genome was checked by chromosome spreading assay, and Cyclin B1 expression also was analysed by Western blotting. Results Giemsa staining and DNA content by flow cytometry showed that MCT induced BxPC-3 cell into polyploid giant cells in vitro. MCT treatment for 72 h appeared 4N, and 8N polyploid giant of BxPC-3 cells, induction of apoptosis, decreased the expression of cyclin B1 in a dose dependent manner. Chromosome analysis demonstrated once again that polyploid giant cell was mainly in 8N. Conclusion Monocrotaline might exert its antitumor effect by blocking the cell cycle, inducing apoptosis, and down-regulating Cyclin B1 protein.
Key words: monocrotaline     pancreatic cancer cells     polyploid giant cells     Cyclin B1     apoptosis    

野百合为蝶形花科(Papilionaceae)猪屎豆属Crotalaria Linn. 植物野百合Crotalaria sessiliflora L. 的干燥全草,别名农吉利、鼠蛋草、响铃草、芝麻响铃铃、细叶芝麻铃等,其味淡,性平,功能为清热、利湿、解毒[1]。在我国广泛用于多种疾病的治疗,主治痢疾、疮疖、耳鸣耳聋、头晕目眩及各种癌症如皮肤鳞状上皮癌、食管癌、宫颈癌等[2]。野百合碱(monocrotaline)是野百合主要的活性成分。胰腺癌恶性程度高、预后差,且发病率近年来有上升趋势。目前,胰腺癌的早期诊断比较困难,确诊时多已是进展期,手术切除率低,化疗、放疗后仍易复发和转移,胰腺癌患者的平均生存期为6个月,位居癌症死亡的第5位[3]。BxPC-3细胞系来源于低分化胰腺导管腺癌患者,其倍增时间为54 h,染色体数目为59条(2N),具有转移潜能。本研究选择人胰腺癌细胞株BxPC-3作为研究对象,探讨野百合碱对胰腺癌的抗肿瘤作用及相关机制。

1 材料 1.1 药品与试剂

野百合碱(monocrotaline,MCT,质量分数≥98%)购于美国Sigma公司,用二甲基亚砜(DMSO)配成储存液,-20 ℃保存,实验时用RPMI 1640培养液稀释,DMSO的体积分数小于0.1%。噻唑蓝(MTT)、碘化丙锭(PI)购自美国Sigma公司;Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒购自美国BD公司;DMEM培养液为美国Gibco公司产品;胎牛血清为杭州四季青生物公司产品;培养液RPMI 1640购自Gibco公司;鼠抗人Cyclin B1单克隆抗体、ECL化学发光试剂盒购自美国Santa cruz公司;羊抗鼠HRP-IgG为Sigma公司产品。

1.2 仪器

FACS calibur流式细胞仪(美国Becton- Dickinson公司)、Thermo细胞培养箱(美国Thermo公司)、Olympus倒置相差显微镜(日本)、Thermo Varioskan Flash型多功能酶标仪(美国Thermo公司)。

1.3 细胞

人胰腺癌细胞株BxPC-3由德克萨斯理工大学王明海教授惠赠。

2 方法 2.1 细胞培养

BxPC-3细胞用含10%胎牛血清的RPMI 1640培养液,在37 ℃、5% CO2和一定湿度的培养箱中孵育,培养液中含青霉素100 U/mL、链霉素100 mg/mL,细胞生长达汇合状态时,0.25%胰蛋白酶消化后传代。全部实验均采用对数生长期细胞,重复3次实验。

2.2 MTT法检测细胞增殖

实验分为对照组(RPMI 1640)和不同质量浓度(5、10、20 μg/mL)野百合碱组。MTT比色法[4]分别测定野百合碱作用24、48、72 h 后BxPC-3细胞的吸光度(A570)值,计算细胞增殖率(增殖率=实验组A570值/对照组A570值),每组均重复3次。

2.3 Giemsa染色法观察BxPC-3细胞形态

细胞按“2.2”项加样品培养72 h后终止培养,取出盖玻片,0.01 mol/L PBS洗5 min,置于分析纯甲醇中固定10 min后取出,挥干甲醇。将吉姆萨(Giemsa)染液与pH 7.2的索伦森氏(Sorensen)磷酸缓冲液以1∶9混合成工作液,加于盖玻片上染色10~20 min(镜下观察染色程度),待细胞充分显色后流水冲洗盖玻片,立即进行拍照和图像分析。

2.4 细胞倍性分析

5、10 μg/mL野百合碱分别处理BxPC-3细胞72 h后,收集漂浮及贴壁细胞,70%冰乙醇固定后,置于-20 ℃储存备用。以单纯加入0.1% DMSO处理作为对照组。取出备用的收集细胞,用PBS洗涤及离心后,加入1 mg/mL RNase A和50 μg/mL PI,反应并染色30 min,流式细胞仪分析细胞倍性。

2.5 细胞染色体分析

取生长状态良好的细胞,接种于96孔细胞培养板内,细胞随机分为对照组和野百合碱(5、10、20 μg/mL)组,每组设3个重复,培养72 h后进行染色体分析。按常规方法制备染色体标本,于收集细胞前2 h加入秋水仙素(终质量浓度为0.05 mg/mL),常规方法收集细胞,加入0.075 mol/L KCl溶液低渗作用30 min,离心取沉淀细胞,再用甲醇-冰醋酸(3∶1)混合液固定2~3次,每次20 min。取4 ℃洁净载玻片滴片制备染色体标本,用Giemsa染色后于光镜下进行核型及染色体数量分析。

2.6 流式细胞仪检测细胞凋亡

分组、给药与细胞培养时间同“2.4”项,每组设5个复孔。各组收集BXPC-3细胞1×106个,离心,弃上清,用冷PBS洗涤2次,按照Annexin V- FITC/PI染色试剂盒说明操作,分别加入缓冲液185 μL、Annexin V 10 μL、PI 5 μL,混匀,避光20 min,离心后弃去上清液,再加入冷PBS洗涤1次,用PBS 400 μL悬浮细胞,流式细胞仪检测细胞凋亡率。

2.7 蛋白表达检测

取生长状态良好的细胞,接种于60 mm细胞培养皿内,细胞随机分为对照组和野百合碱(5、10、20 μg/mL)组,每组设3个重复,培养72 h后进行蛋白表达分析。采用1% NP40冰上裂解细胞球30 min,4 ℃条件下6 500×g离心30 min提取细胞总蛋白,BCA试剂盒进行蛋白定量。取各组细胞总蛋白20 μg上样,进行8% SDS-PAGE分离蛋白,电转移至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜上。5%脱脂奶粉封闭2 h后,分别加入一抗Cyclin B1、β-actin(1∶1 000),室温反应2 h,TBST洗涤后加入相应二抗再反应1 h,膜经TBST洗涤后与电化学发光检测试剂反应,X光胶片压片曝光,显示结果。

2.8 统计学处理

数据以x±s表示,应用SPSS 16.0统计软件进行方差分析。

3 结果 3.1BxPC-3细胞增殖的抑制作用

5、10、20 μg/mL野百合碱对BxPC-3细胞的增殖有明显的抑制作用,且抑制作用呈剂量和时间依赖性,见表 1

表 1 野百合碱对BxPC-3增殖的抑制作用 (x±s,n=3) Table 1 Inhibition of MCT on proliferation of BxPC-3 cells (x±s,n=3)
3.2BxPC-3 细胞形态的影响

与对照组比较,5 μg/mL野百合碱处理72 h后出现了巨型多核细胞,体积是对照组细胞的10~20倍,且20 μg/mL野百合碱处理后,90%的细胞成巨型多核细胞,见图 1

图 1 二倍体和多倍体BxPC-3细胞 Fig.1 BxPC-3 cells of diploid and polyploid
3.3BxPC-3细胞倍性的影响

野百合碱诱导BxPC-3细胞的结果发现,随着野百合碱质量浓度的增加,多倍体细胞(4N、8N)逐渐增加,存在剂量依赖关系(P<0.05),见图 2

图 2 流式细胞仪检测野百合碱诱导的BxPC-3细胞DNA Fig.2 DNA content in MCT-induced BxPC-3 cells analyzed by flow cytometry
3.4BxPC-3 染色体组的影响

根据美国ATCC的数据显示,BxPC-3细胞系的染色体数目为59条(2N)。染色体分析结果表明,野百合碱诱导BxPC-3细胞出现4N(染色体数目118±4)和8N(染色体数目236±6),进一步验证了上述数据的可靠性,见图 3

图 3 染色体展示检测BxPC-3的染色体数目 Fig.3 Chromosome number of BxPC-3 cells
3.5BxPC-3 细胞凋亡的影响

Annexin V-FITC/PI双标法检测结果显示,不同质量浓度的野百合碱均可诱导BxPC-3细胞凋亡,凋亡率随野百合碱质量浓度的增加而增大,与对照组比较差异显著(P<0.05),且野百合碱不同质量浓度组间BxPC-3细胞凋亡率比较也有显著差异(P<0.05)。结果见图 4

图 4 经野百合碱处理后BxPC-3细胞的凋亡情况 Fig.4 Induced apoptosis of BxPC-3 by MCT treatment
3.6BxPC-3细胞Cyclin B1蛋白表达的影响

与对照组比较,不同质量浓度的野百合碱作用于BxPC-3细胞72 h后BxPC-3细胞Cyclin B1的蛋白表达水平下降,差异显著(P<0.05),且呈剂量依赖性,见图 5

图 5 野百合碱抑制BxPC-3细胞Cyclin B1蛋白的表达 Fig.5 Inhibition of MCT on protein expression of Cyclin B1 in BxPC-3 cells
4 讨论

野百合碱是从中药野百合中分离得到的单体化合物。体外和动物实验表明,野百合碱能够抑制肺癌、胃癌、肝癌、乳腺癌等多种肿瘤细胞的增殖与生长,其作用机制涉及直接杀伤肿瘤细胞、抑制核酸代谢、抑制肿瘤血管生成、诱导细胞凋亡、促进细胞分化等诸多方面[2],目前对于野百合碱抗肿瘤的作用机制还缺乏深入研究。本研究探索野百合碱对胰腺癌细胞的增殖抑制作用及其分子机制,以期为寻找新抗癌药物提供有价值的信息。

在基因毒性化合物、放射线、应激等DNA损伤情况下,肿瘤细胞往往形成多倍体单核巨细胞和多核巨细胞,这些巨细胞大部分趋于死亡或凋亡,促进多倍体细胞形成是控制某些恶性肿瘤进展的一种途径,但目前对肿瘤巨细胞形成和演变仍存在很大争议[5]。本研究表明,应用野百合碱诱导BxPC-3细胞多倍体化,在5~20 μg/mL随着野百合碱质量浓度的增加和作用时间的延长,多倍体化细胞逐渐增加,并且存在着明显的时间和剂量依赖关系。野百合碱诱导的多倍体BxPC-3细胞含有多个细胞核,而不是分叶核,说明其已发生了核分裂。实验通过细胞形态学和流式细胞术分析,野百合碱诱导BxPC-3细胞的体积增大,2N和4N细胞逐渐减少,8N细胞逐渐增多,也进一步证明了野百合碱诱导BxPC-3细胞巨型多倍体化。野百合碱处理BxPC-3细胞后,细胞核分裂,而胞质不分裂,提示细胞停滞在细胞周期的G2/M期。

细胞周期的调控在肿瘤的发生和治疗中有重要作用[6]。Cyclin B是作用于G2/M期的重要周期蛋白,可以促进G2/M期转换而加速细胞周期进程。随着正常细胞周期和肿瘤细胞周期的深入研究,可以认为Cyclin B的异常表达与多种肿瘤的发生、发展相关,是一个极好的肿瘤标志物,对肿瘤的恶性生物学行为,及肿瘤的预后有意义[7]。Cyclin B1在G2期表达增加,Cyclin B1与p34cdc2形成激酶复合物,控制细胞由G2进入M期。本研究结果显示,野百合碱作用72 h后,BxPC-3细胞Cyclin B1蛋白表达下降,提示野百合碱可能通过降低Cyclin B1蛋白表达将细胞阻滞在G2/M期,抑制细胞增殖。

野百合碱通过抑制周期蛋白Cyclin B1的表达,导致多倍体巨细胞增加,出现4N、8N巨型BxPC-3多倍体细胞,促使BxPC-3细胞凋亡或死亡,然而其具体的作用机制还有待于进一步研究。

参考文献
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[5] Davoli T, de Lange T. The causes and consequences of polyploidy in normal development and cancer [J]. Annu Rev Cell Dev Biol, 2011, 27: 585-610.
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