2. 郑州工业应用技术学院 医学院, 河南 郑州 451150
2. School of Medicine, Zhengzhou University of Industrial Technology, Zhengzhou 451150, China
apelin是一种新发现的内源性神经肽,已被确认是G蛋白偶联受体APJ的内源性配体[1]。apelin前体肽(preproapelin)经过蛋白水解后成熟,在不同的组织中最终生成具有生物活性的apelin片段,如apelin-36、apelin-17、apelin-13等[2]。apelin-13的氨基酸序列在不同的物种中较为保守,在活体内比其他apelin片段具有更强的与其受体结合的能力和激活能力[1,3]。apelin/APJ系统广泛分布于中枢神经系统和外周组织,包括大脑,心脏、肺、肾等[2]。研究发现apelin及其受体APJ在下丘脑核团有表达,包括下丘脑室旁核(PVN)和正中视前核(MnPO)[2],这些结构在体温调节、发热和体液平衡中发挥作用[4]。然而急性中枢注射apelin对小鼠体温调节的研究较少。apelin/APJ系统参与体内多种生理功能和病理活动的调节,如心血管疾病、免疫调节、体液平衡、内分泌、缺血再灌注损伤保护等[2, 5,6]。发热是临床上常见的体征,apelin-13对发热的作用仍然是未知的。本实验应用小鼠脂多糖发热模型对apelin-13的解热效应进行评价。
1 材料与方法 1.1 主要试剂与仪器aplein-13由吉尔生化(上海)有限公司提供,质量分数>95%,产品批号P150602-CJ236245。脂多糖(分离自大肠杆菌血清型055∶B55,产品批号084M4107V)、亚甲基蓝均购于美国Sigma公司,并溶于无菌非致热源的生理盐水中,-20 ℃冻存,备用。
BL-420E+生理记录仪购于成都泰盟科技有限公司,测量直肠温度的传感器购自河北省高碑店新航机电设备有限公司。微量进样器购于上海医疗器械有限公司。
1.2 动物及分组雄性成年昆明系小鼠由河南省动物实验中心提供,动物许可证号SCXK(豫)2010-0002,体质量18~22 g。动物饲养温度为21~25 ℃,相对湿度为40%~60%,自然光照,普通饲料喂养。实验期间小鼠可自由饮水、摄食。
小鼠随机分为对照组,脂多糖50、150 ng组,apelin-13 3、10 nmol组,脂多糖150 ng+apelin-13 3 nmol组和脂多糖150 ng+apelin-13 10 nmol组。apelin-13剂量的选择依据文献报道[7]。
1.3 处理侧脑室注射依据Haley等的方法[8]和本课题组报道方法[3]。注射位点距离中缝1.5 mm,前囱1 mm,深度3 mm。药物或生理盐水以10 μL/min的恒定速度注射,注射体积为4 μL。对照组注射等量的无菌 0.9% NaCl溶液。测试完成后,通过注射亚甲基兰来检验注射位点是否正确。
1.4 体温检测实验中实验环境安静,避免小鼠躁动。实验时,将小鼠放置在Rosow等[9]发明的隔绝外热的特殊装置上。小鼠体温测量方法依据文献报道[10]。实验前8 h禁食不禁水,测定肛温前让动物排空粪便,将温度传感器的一端探头上涂凡士林,插入到小鼠直肠内2.5 cm处,另一端连接在生理记录仪实验系统上记录小鼠的体温。给药前多次测量小鼠体温,使小鼠习惯体温测定操作,取各组小鼠于试验当天最后连续3次体温(0.5 h监测1次)的平均值作为基础体温。给药后0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0 h分别监测记录各组小鼠的体温,计算各组小鼠在各时间点体温的变化(实测体温-基础体温)。根据实验结果绘制温度变化曲线,并计算出曲线下面积(area under the curve,AUC)。
1.5 数据统计实验数据表示采用x±s 的形式。数据的差异性采用unpaired t检验分析。
2 结果 2.1 apelin-13对小鼠各时间点体温变化的影响
与对照组比较,脂多糖50 ng组仅在3.5、4.0 h温度显著升高(P<0.05),脂多糖150 ng组在1.5、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0 h温度均显著升高(P<0.05),引起发热效果明显,因此选择注射150 ng脂多糖作为模型组进行下一步实验。侧脑室单独注射3、10 nmol apelin-13对小鼠温度变化没有明显影响。侧脑室注射3 nmol apelin-13在1.5 h降低150 ng脂多糖引起的发热(P<0.05);而10 nmol apelin-13在1.5、2.0、3.0 h均降低150 ng脂多糖引起的发热(P<0.05),见表 1。
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表 1 apelin-13对小鼠体温变化的影响 Table 1 Effect of apelin-13 on change of body temperature in mice |
与对照组比较,150 ng脂多糖导致小鼠体温AUC明显增加(P<0.05)。与脂多糖150 ng组比较,脂多糖150 ng+apelin-13 10 nmol组体温AUC显著减少(P<0.05);脂多糖150 ng+apelin-13 3 nmol组体温AUC虽然减少,但是并不具有显著性差异,见表 2。
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表 2 apelin-13 对小鼠体温变化的曲线下面积的影响 Table 2 Effect of apelin-13 on change of AUC of body temperature in mice |
脂多糖是革兰阴性菌细胞壁的主要成分,是一种常见的外源性致热原,可作为致热原激活单核巨噬细胞产生内生致热原而导致机体发热[11]。侧脑室直接注射脂多糖经常作为急性神经炎症的动物模型。研究证实中枢微量的脂多糖就能引起剂量相关性的发热,小鼠模型解热实验常用脂多糖剂量为100~125 ng/只[10],本实验中150 ng剂量引起的发热趋势与文献报道一致。
apelin/APJ系统在中枢神经系统的分布提示其可能在体温调节中发挥作用。目前apelin对体温调节的研究甚少。Valle等[12]发现第三脑室连续10 d注射1 μg apelin-13增加了C57BL/6小鼠的体温,但是该体温的升高完全依赖于小鼠活动量的增加。Jászberényi等[13]发现侧脑室10 μg apelin-13增加了Wistar大鼠的体温,但是这种作用并没有排除小鼠运动活动的影响。在本实验测量小鼠体温时将小鼠提前固定,因而排出了运动产热这个因素的影响。在无运动因素影响时,急性侧脑室3、10 nmol apelin-13对小鼠体温没有明显的影响。侧脑室3 nmol apelin-13具有降低脂多糖引起的小鼠发热作用,但是差异并不显著;10 nmol apelin-13能够明显降低脂多糖引起的小鼠体温升高,提示10 nmol apelin-13具有缓解脂多糖诱导的小鼠发热作用,但其解热机制有待进一步研究。
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